Симптоматическое бесплодие причины профилактика

Старческое бесплодие — нарушение плодовитости самок и производителей вследствие изменений, наступивших в связи со старостью. О старческом бесплодии можно говорить, если оно наступает у коров в 15-20 лет, у овец, коз, свиней — в 7-8 лет, а у кобыл в 20-27 лет. Но неполноценное кормление, плохое содержание и неправильная эксплуатация животных может ускорить наступление старческого бесплодия. Наоборот, хорошие условия увеличивают срок использования животных. В практике известны случаи весьма длительного племенного их использования: лошадей более 30 лет, быков и коров — 20-30 лет, овец-16-20 лет и свиней — 15 лет.

Значение старческого бесплодия в происхождении яловости невелико, так как обычно средний возраст жизни коров составляет всего 4-5 лактации.

бесплодие животное осеменение яловость

Симптоматическое бесплодие — нарушение плодовитости из-за заболевания самок и производителей. При нарушении ветеринарно-санитарных правил в родовой и послеродовой периоды, во время осеменения или при использовании зараженной спермы возникают различные болезни. При воспалительных процессах создаются неблагоприятные условия для процесса оплодотворения, спермин, яйцеклетка или развивающийся зародыш гибнут.

Массовые заболевания коров, обусловливающие симптоматическое бесплодие, наблюдаются только в тех хозяйствах, где имеются серьезные погрешности в кормлении, содержании, эксплуатации и осеменении, т.е. при наличии явно ненормальных условий существования животных. Обычно, как показывают данные акушерской науки и опыт передовиков, удельный вес заболеваний среди причин бесплодия невелик. Но это не означает, что можно ослабить лечебные мероприятия. Наоборот, следует решительно бороться с преждевременной выбраковкой бесплодных животных.

Существует ошибочное убеждение в том, что бесплодную из-за болезней корову лечить невыгодно. Считается, что чем тратить средства на лечение коровы, пусть даже высокопродуктивной, 2-4 мес, лучше пустить ее на мясо. Такой подход мешает сохранению маточного поголовья, наносит большой экономический ущерб. Ведь, для того чтобы заменить корову, надо вырастить телочку, затратить минимум 27 мес. (в 18-месячном возрасте телку осеменяют, плюс 9 мес. стельности), не получая от нее молока. При этом первотелка всегда дает меньше продукции, чем взрослая корова. К тому же нет гарантии, что она станет высокопродуктивным плодовитым животным. Простое сопоставление стоимости содержания и восстановления плодовитости коровы за 2-6 и даже 10 мес. с затратами в течение 27 мес, требующихся на выращивание первотелки, доказывает целесообразность улучшения лечебного дела, более хозяйского и обоснованного подхода к выбраковке животных по причине их бесплодия.

Наиболее часто симптоматическое бесплодие у коров возникает при задержании последа, послеродовых эндометритах, субинволюции матки и функциональных расстройствах яичников (персистентные желтые тела, кисты).

Задержание последа — задержание в матке плодных оболочек после рождения плода или аборта (у кобыл — через 35 мин., у коров, овец и коз — через 5-6 ч).

Задержание последа встречается у животных всех видов, но чаще у коров, особенно при бруцеллезе. При этом у высокопродуктивных коров этот недуг наблюдается чаще, чем у средне — и низкопродуктивных. В некоторых хозяйствах он поражает 25-30 и даже 50% высокопродуктивных коров, вызывая яловость до 40% животных, снижает их молочную продуктивность в среднем на 11,4%, приводит к преждевременной выбраковке 13-19,6% животных и многим другим отрицательным явлениям.

Предрасполагающие причины задержания последа различны. Главные из них — одностороннее неполноценное кормление, отсутствие или недостаточный моцион, неправильная эксплуатация коров (300-дневная и более длительная лактация, короткий сухостойный период), плохой микроклимат, тяжелые, патологические роды.

Различные животные по-разному реагируют на задержание последа. У коров общее состояние организма обычно в течение двух суток остается в пределах нормы. У кобыл уже через несколько часов после рождения жеребенка отмечается общее угнетение, повышается температура и к концу первых-вторых суток развивается острый сепсис, заканчивающийся в большинстве случаев летально. У коз, свиней задержание последа часто осложняется септикопиемией.

Прогноз зависит от продолжительности задержания последа, наличия воспалительного процесса в матке и результатов отделения последа.

Лечение животных с задержанием последа направлено на быстрое удаление задержавшихся плодных оболочек, борьбы с инфекцией, повышение тонуса матки и всего организма. Приступают к лечению немедленно по истечении срока, когда послед должен отделиться. Из всех средств, рекомендуемых при лечении коров с задержанием последа, лучшим является спаивание околоплодных вод (5-6 л). В состав их входит много биологически важных веществ — углеводы, белки, аминокислоты, натрий, кальций, фосфор, калий, медь, железо, молибден, марганец, литий, никель, свинец. Они обладают постепенным, длительным (до 8 ч) и достаточно сильным действием на матку. Максимум их действия проявляется через четыре часа. Спаивать околоплодные воды нужно сразу же после того, как корова облизала теленка. В этом случае эффективность их действия значительно выше, меньше случаев задержания последа. У хорошо подготовленных к отелу коров задержания последа, как правило, не наблюдается.

Таким же постепенным, но менее сильным и менее продолжительным действием (до 5-6 ч) обладает синэстрол (1% -ный масляный раствор). Питуитрин и прозерип вызывают интенсивные сокращения матки уже через 20-30 мин, но их действие непродолжительно.

При сильной атонии матки или прочном сращении детской и материнской плацент применение указанных и многих других средств, как правило, не достигает цели и послед приходится удалять оперативным путем. При этом какие-либо дезинфицирующие растворы применять не рекомендуется. В дальнейшем для ускорения инволюции матки и предупреждения эндометритов применяют маточные средства и антибактериальные препараты (в виде порошков, капсул и др.). Надежным средством служат различные новокаиновые блокады, применение 7% -ного раствора ихтиола на 40% -ном растворе глюкозы. Животным обязательно предоставляют моцион, налаживают правильное их содержание в сухом, чистом помещении.

Послеродовой эндометрит — острое воспаление слизистой оболочки матки, протекающее в виде катарального, гнойного, фибринозного и смешанного воспалений. Наблюдается у всех животных, по чаще всего у коров. Воспаление возникает главным образом из-за внедрения в матку различных микроорганизмов при задержании последа, субипволюции матки, патологических родах, абортах.

При катарально-гнойном эндометрите характерным признаком служит усиленное выделение из матки жидкого слизисто-гнойного экссудата, особенно утром, у лежащих животных.

Наукой и практикой предложено много средств лечения животных при эндометритах.

Не всегда дает эффект и применение антибиотиков. Их антимикробное действие из-за привыкания микроорганизмов с каждым годом снижается.

При лечении коров, больных эндометритом, следует отдать предпочтение тем средствам, которые обладают противовоспалительным, рассасывающим, болеутоляющим действием, активизируют не только матку, но и функцию яичников. Таким средством является озокерит (горный воск). Он обладает большой теплоемкостью, низкой теплопроводностью, значительной теплоудерживающей способностью, что усиливает его воздействие на организм больного животного. Уже после 3-10-часового наложения озокерита наблюдается значительное улучшение. После шести-восьми процедур моторика матки у больных коров восстанавливается и по своему характеру не отличается от функции у здоровых животных.

Озокеритотерапия, в особенности в сочетании со стрептомициновой эмульсией, — доступный и эффективный метод лечения коров, больных эндометритом. При таком сочетанном методе лечения удается добиться 100%ого выздоровления коров и их оплодотворения к 45-му дню после родов.

Хорошие результаты дает применение различных видов новокаиновой блокады. Новокаиновая блокада дает лучший эффект, чем использование многих маточных и нейротропных препаратов (синэстрол, прозерин, карбо-холин и др.). По материалам В.Г. Мартынова, после применения коровам околопочечной новокаиновой блокады уже через час сокращения матки значительно усиливаются, через 4-5 ч и на второй день они становятся мощными, ритмичными. При внутриаортальном введении новокаина максимальные сокращения матки регистрируются через 24 ч и удерживаются на таком уровне до 48 ч. По нашим данным, после введения 1% -ного раствора в дозе 150 мл в брюшную аорту через 4 ч наблюдаются обильные выделения, которые продолжаются в течение 1-2 суток. Однако этот эффективный способ лечения требует высокой квалификации ветеринарного специалиста и помощника. Следует учитывать, что после двукратной инъекции, производимой иглой длиной 18 см, на месте введения появляется припухлость, она болезненна и при последующих инъекциях животные беспокоятся.

Высокий эффект дает также введение 10 мл 7% -ного раствора ихтиола на 40% -ном растворе глюкозы в ягодичные мышцы на глубину 4-5 см. Этот метод лечения прост, и его может применить в любых условиях одни ветеринарный работник. Инъекции повторяют через 48 ч. Получены хорошие результаты и от введения ихтиола (30% -ный раствор в дозе 500 мл) непосредственно в полость матки в сочетании с подкожными инъекциями маточных препаратов (синэстрол, окситоцин, питуитрин и др.).

В последнее время предложено много специальных лекарственных форм (фуразолидоновые свечи, геомицин, септиметрин, экзутер), рассчитанных на уничтожение микрофлоры и освобождение матки от экссудата. При сравнительной оценке лечения коров при послеродовых эндометритах фуразолидоновыми свечами, экзутером, септиметрииом и 7% -ным раствором ихтиола на 40% -ном растворе глюкозы наилучшим оказалось применение последнего средства.

При всех методах лечения необходимо обратить особое внимание на повышение естественной устойчивости организма больного животного.

Субинволюция матки — замедленное по сравнению с нормальным обратное развитие матки после родов до состояния, характерного для небеременного животного. Особенно часто (60% и более) она наблюдается у высокопродуктивных коров при одностороннем обильном кормлении концентратами, бардой, пивной дробиной, содержащими мало макро-, микроэлементов, витаминов, необходимых организму; чрезмерной эксплуатации; отсутствии или недостатке движения. Возникновению этой болезни способствуют патологические роды, задержание последа, грубое обращение с животными. Этому способствует также неправильное машинное доение (передержка доильных стаканов, увеличение количества пульсаций, уровня вакуума, грубая сосковая резина и т.д.). При всех, даже малейших, дефектах машинного доения возникают болевые раздражения сосков, богатых различными рецепторами, что отрицательно воздействует на весь организм коровы. В результате замедляется инволюция бывшего желтого тела беременности, рост новых фолликулов, что тормозит не только инволюцию матки, но и все последующее проявление половой функции. В хозяйствах, где практикуется доение коров дефектной аппаратурой, чаще отмечаются различные нарушения воспроизводительной функции, снижается оплодотворяемость коров, увеличивается количество дней бесплодия.

При субинволюции матки животное угнетено, аппетит понижен, температура тела незначительно колеблется. Характерным признаком является продолжительное, свыше двух недель, выделение лохий темно-коричневого цвета, иногда с примесью крови. Если кровянистые выделения наблюдаются более восьми дней, то отмечается длительная субинволюция. У крупных коров при глубоком опускании матки, отсутствии ее сокращений выделения иногда прекращаются, и только утром при лежании животного иногда удается обнаружить обильные истечения. Такие выделения наблюдаются, как правило, по возвращении животного с пастбища или после активного моциона.

При лечении в первую очередь обращают внимание на повышение общей устойчивости организма, применяют новоканновые блокады, маточные средства, обязательно предоставляют активный моцион и организуют правильную эксплуатацию животных. В качестве антисептика целесообразно вводить 30% -ный раствор ихтиола (500 мл).

Профилактика субинволюции матки, как и всех других осложнений, включает применение таких мероприятий, как организация полноценного кормления, своевременный запуск животных, предоставление им активного моциона, облизывание коровой новорожденного, дача околоплодных вод и молозива, осеменение в первый месяц после родов.

Необходимо учитывать и место проведения родов. В родильных отделениях, как показывает практика (совхозы «Московский», «Фаустово» Московской области и др.), вместо стойл лучше иметь специальные боксы. В них роды протекают быстрее, меньше различных осложнений. В такой бокс корову (соответственно обработанную) помещают за несколько дней до отела и содержат без привязи. После рождения теленка корове дают возможность облизать его и покормить, что усиливает сокращения матки и ускоряет отделение последа.

Для достижения высокой оплодотворяемости коров в первый месяц после отела в комплексе мероприятий необходим тщательный контроль за течением послеродового периода. Для этого ученые Украинской сельскохозяйственной академии (И.С. Нагорный, Г.Н. Калиновский) разработали методы биохимического контроля с помощью цветных реакций.

Контроль за инволюцией половых органов осуществляют пробой осаждения в лохиях (послеродовых выделениях) муцинов при помощи 1% -ного раствора уксусной кислоты или раствора этакридина лактата (риванола) 1: 1000. В чистую пробирку наливают 2 мл лохий и добавляют 8 мл осаждающей жидкости. Если послеродовой период протекает нормально, то образуется сгусток муцинов, не разбивающийся при встряхивании, осаждающаяся жидкость прозрачная. При острых послеродовых эндометритах образуется осадок, разбивающийся при легком встряхивании, в результате чего осаждающая жидкость становится мутной.

Для контроля состояния половых органов в период половой охоты, наступившей в первый месяц после отела, исследуют слизь. Для реакции берут 10% -ный раствор едкого натра, 1% -ный раствор медного купороса, пробирки со штативом и слизью, взятой перед осеменением коров (в момент охоты).

В пробирки наливают 2 мл слизи, добавляют 2 мл раствора едкого натра и 10-15 капель раствора медного купороса. Пробирки закрывают резиновой пробкой и в течение 1-2 мин хорошо взбалтывают и ставят в штатив на 10-15 мин.

Если инволюция половых органов закончена и матка полностью очищена от лохий, то содержимое пробирки будет светлым со слабосиним или фиолетовым оттенком, с синим сгустком в верхней части и осадком на дне. Таких коров немедленно осеменяют. Если содержимое пробирки окрашено в красный, красно-фиолетовый или ярко фиолетовый цвет, то это свидетельствует о незаконченной инволюции, неполном очищении матки от лохий. Таких коров тщательно исследуют и проводят специальное лечение.

В происхождении симптоматического бесплодия определенное значение имеют функциональные расстройства, в частности персистентные желтые тела.

Если желтое тело задерживается в яичнике свыше 25-30 дней, то его называют персистентным (задержавшимся). Оно обусловливает возникновение анафродизии (прекращения половых циклов) различной длительности. Мнения различных авторов о распространении, причинах возникновения, клинических проявлениях, диагностике и методах лечения коров при этом заболевании очень разноречивы.

Причины возникновения персистентного желтого тела различны. Чаще всего они являются следствием серьезных погрешностей в кормлении (чрезмерная дача концентратов при недостатке и низком качестве сена, силоса), содержании (недостаток моциона), неправильной эксплуатации (300-дневная и более длительная лактация), болезней матки и пропуска половой охоты. По одной только этой причине у 20-38,4% здоровых коров задерживается наступление очередного цикла в среднем до 43-63 дней.

Лечение должно быть направлено на устранение причин, способствующих образованию персистентных желтых тел, путем использования общих и местных методов воздействия. Некоторые специалисты рекомендуют удалять желтое тело, отдавливая его рукой через прямую кишку, и считают этот метод безопасным и безвредным, потому что полостные кровотечения встречаются редко, а при внутрибрюшных кровотечениях до 5 и даже 10 л у коров резких отклонений от нормы в организме не наблюдается. Поскольку персистентное желтое тело является, как правило, следствием пищевого, климатического и других форм бесплодия, то по одному этому энуклеация не может быть эффективным средством восстановления плодовитости у коров. Кроме того, эта операция вызывает глубокие, зачастую необратимые изменения в яичнике, наносится значительная травма, развивается воспалительный процесс с последующим разрастанием соединительной ткани, нарушается кровоснабжение и так далее. Все это приводит к перерождению яичников.

источник

Нарушение воспроизводства вследствие заболевания половых и других органов самок и производителей незаразными, инфекционными и инвазионны­ми болезнями. Биологические факторы (инфекция, инвазия) могут обусловить бесплодие, либо оказывая общее патоген­ное действие на организм, либо вызывая комплекс местных вос­палительных процессов и по­следующие изменения в поло­вых органах, выражающиеся в вагинитах, цервицитах, эндо­метритах, мио- и периметритах, сальпингитах и овариитах, рубцовых стягиваниях, перерожде­ниях ткани. У самок и произво­дителей бесплодие может быть при болезнях пищеварительной, дыхательной и сердечно-сосуди­стой систем и других органов. Нарушение воспроизводства при этих заболеваниях обуслов­лено реакцией всего организма на патогенный фактор в виде повышения температуры тела, изменения состава крови, на­рушения обмена веществ.

Особенно часто симптомати­ческое бесплодие самок связа­но с акушерско-гинекологическими заболеваниями, т. е. бо­лезнями яичников, яйцепроводов, матки, влагалища и мо­лочной железы (см. болезни этих органов). Развитие пато­логических процессов в поло­вых органах самок вызывает нарушение функции яичников (рост и созревание фоллику­лов, образование гормонов) и сократительной функции яйцепроводов и матки, изменение состава рН среды этих органов, а также нарушение их проходи­мости.

Частота распространения акушерско-гинекологических за­болеваний у самок, по данным авторов, различна и может со­ставлять в среднем 15—35 % от общего количества бесплод­ных животных в хозяйстве.

В зависимости от локализа­ции и характера воспалитель­ного процесса причинами и факторами бесплодия самок при акушерско-гинекологиче­ских заболеваниях следует счи­тать:

нарушение половых циклов — анафродизия (отсутствие поло­вых циклов), неполноценность (отсутствие овуляции, течки, полового возбуждения и охо­ты), реже нимфомания;

невозможность движения спермиев вследствие высокой вязкости слизи матки и яйцепроводов;

гибель спермиев в отдельных участках половых путей в силу неблагоприятного влияния сре­ды, продуктов распада тканей, экссудата, бактериотоксинов, спермиотоксинов и др.;

гибель яйцеклетки или зиго­ты;

невозможность проникнове­ния зиготы в полость матки вследствие сужения или закры­тия просвета яйцепроводов, или потери сократимости.

Наиболее распространенны­ми из факторов, по-видимому, следует считать гибель спермиев. Уже в силу естественного отсева миллионы и миллиарды спермиев погибают при продви­жении по половым путям, встре­че спермиев с яйцеклеткой мо­гут помешать механические препятствия в виде рубцов, сра­щений, сужений просвета по­ловых путей вследствие пере­рождения или отека их стенок, развития новообразований и на­рушения сократимости матки и яйцепроводов.

Иммунные факторы беспло­дия. В крови каждого организ­ма имеются спермиотоксины, убивающие спермиев при кон­такте с ними. Спермиотоксины могут быть качественно различ­ными (аутоспермиотоксины; изоспермиотоксины, убиваю­щие спермиев самца того же вида; гетероспермиотоксины, убивающие спермиев, принад­лежащих самцу другого вида). Количество спермиотоксинов можно увеличить искусственно, путем парэнтерального введе­ния спермы в организм, в ре­зультате чего последний реаги­рует образованием антител — спермиотоксинов. При соблюде­нии определенной дозировки и последовательности подкож­ных инъекций в организме сам­ки удается создать такую кон­центрацию спермиотоксинов, при которой поступающие в ва­гину спермин убиваются. Сле­довательно, этим способом моле­но получить своеобразное ис­кусственное бесплодие (привив­ку против беременности).

В половых путях самки, как отмечалось выше, всегда име­ются в небольшом количестве спермиотоксины. Концентрация их при воспалительных процес­сах резко увеличивается. Обра­зующиеся при воспалительных процессах бактериальные токси­ны также оказывают вредное влияние на спермиев.

Спермин и спермальная плаз­ма являются носителями спе­цифических антигенов белковой природы. Антигены при введе­нии в половые пути самки спо­собны преодолевать иммунный барьер матки и проникать в кровь. Иммунная реакция ор­ганизма на чужеродные белки спермы проявляется образова­нием спермиоантител, которые накапливаются в секретах вла­галища, матки и, яйцепроводов. Они могут сохраняться в кро­ви и половой слизи более двух месяцев.

Спермиоантитела проявляют свое действие как агглютинины (склеивают спермин), лизины (растворяют спермин) и могут вызвать местные аллергические реакции на введенную сперму (спазматические сокращения матки, усиленный фагоцитоз и др.). При многократных осеме­нениях самки происходит ее иммунизация. Воспалительные процессы в половых органах (вагиниты, цервициты, эндомет­риты, сальпингиты) усиливают иммунные реакции. Их возник­новению способствуют также травмы слизистых оболочек влагалища и шейки матки при осеменении, введение спермы во время маточных кровотече­ний.

Незавершенная инволюция матки, А-гиповитаминозы так­же влияют на иммунобарьерную функцию слизистых оболо­чек, что способствует нараста­нию концентрации спермиоантител.

Иммунные реакции препятст­вуют процессам оплодотворе­ния (иммобилизация или ги­бель спермиев) либо нарушают развитие зиготы и зародыша (эмбриональная смертность), либо вызывают аборт.

Бесплодие, вызываемое ин­фекционными и инвазионными болезнями. Ряд инфекционных и инвазионных болезней вызы­вают воспалительные процессы в половых органах, нарушая их репродуктивную функцию, и приводят к бесплодию самок и самцов. Одной из характерных особенностей этих болезней яв­ляется то, что чаще всего зара­жение происходит в момент ро­дов, послеродового периода и осеменения. Поэтому такую группу болезней называют ин­фекциями. К половым инфекци­онным и инвазионным болез­ням относят бруцеллез, тубер­кулез, вибриоз (кампилобактериоз), пустулезный вестибуловагинит, инфекционный фолли­кулярный вестибуловагинит, лептоспироз, листериоз, парати­фозный аборт (кобыл), трихо­моноз, токсоплазмоз, случная болезнь (лошадей), некоторые микозы и др. В настоящее вре­мя значительная роль в этио­логии бесплодия принадлежит вирусам, однако факторы ви­русного бесплодия недостаточно изучены.

Большинство указанных бо­лезней вызывают воспалитель­ный процесс с глубокими мор­фологическими изменениями в половых органах, следствием которых является аборт, задер­жание последа, эндометриты, сальпингиты, оварииты, вестибулиты, вестибуловагиниты, обусловливающие длительное бесплодие и нередко выбраков­ку животных.

Поэтому экономический ущерб, наносимый животновод­ству половыми инфекциями, чрезвычайно велик.

Профилактика симпто­матического бесплодия состоит в проведении ветеринарных, зоотехнических, организацион­ных и агрономических меро­приятий.

Ветеринарные мероприятия: строгий повседневный ветеринарно-санитарный контроль и надзор на пунктах искусствен­ного и естественного осемене­ния, а также во время осеме­нения самок на фермах, соблю­дение санитарно-гигиенических правил профилактики болезней животных и в животноводче­ских помещениях; обеспечение правильного ведения родов и нормального течения послеро­дового периода; осуществление постоянного контроля за состоя­нием животных путем регуляр­ной диспансеризации, своевре­менной диагностики и лечения болезней половых и других ор­ганов; исследование всех жи­вотных (коров, кобыл) на 7-й и 14-й день после родов для выявления патологии половых органов в послеродовом перио­де, самок, не проявивших в те­чение 3—4 недель после родов признаков половой охоты, при­чин и форм бесплодия; назна­чение лечения и проведение других мероприятий по ликви­дации бесплодия.

Мероприятия по профилакти­ке бесплодия при инфекцион­ных и инвазионных болезнях проводятся согласно инструк­ции Главного управления вете­ринарии РФ.

В хозяйствах, неблагополуч­ных по инфекционным и инва­зионным болезням, искусствен­ное осеменение должен прово­дить ветеринарный специалист.

Зоотехнические мероприя­тия: строгое соблюдение пра­вил искусственного и естествен­ного осеменения животных, со­держания и использования ма­ток во время беременности и в послеродовом периоде; при вы­явлении признаков заболева­ния немедленное уведомление ветеринарных специалистов.

Организационные мероприя­тия: строительство и оборудо­вание родильных отделений, подбор, обучение и правильное использование кадров.

Агрономические мероприя­тия: обеспечение кормами для диетического кормления боль­ных животных.

Симптоматическое бесплодие при обследовании было установлено у 12 коров. Было проведено лечение данного заболевания.

источник

Бесплодие – распространенная проблема современности, которая диагностируется не только у женщин, но и у мужчин. Она доставляет физический и психологический дискомфорт. Лечение патологии производится разными способами, но лучше стараться не допускать ее появления вообще. Профилактика бесплодия начинается еще в раннем детстве.

Невозможность иметь детей не берется ниоткуда. Ее провоцируют внешние и внутренние негативные факторы. Диагноз ставится в том случае, если у семейной пары не получилось зачать ребенка в течение 1 года регулярной половой жизни без предохранения.

Причиной женского бесплодия становится:

• неправильное развитие половых органов;
• врожденная патология репродуктивной системы;
• эндокринные или гормональные нарушения;
• травма мочеполовой системы, а также оперативное вмешательство в анамнезе;
• венерическая инфекция;
• аборт (у молодой девушки бесплодность развивается после повреждения слизистого слоя матки);
• доброкачественная или злокачественная опухоль;
• радиоактивное облучение;
• стресс, повышенная эмоциональность;
• раннее наступление менопаузы;
• недостаток питания, соблюдение строгих диет (они приводят к нарушению овуляции).

Если женщина не может зачать ребенка, причины нужно выяснять как можно быстрее. После 35 лет шансы забеременеть естественным путем снижаются. Поэтому профилактика бесплодия у женщины важна на этапе взросления.

Бездетность – проблема не только для прекрасной половины человечества, но и для мужчин. Тут есть свои причины:

• эндокринные и гормональные проблемы;
• заболевания внутренних органов (как репродуктивной, так и других систем);
• генетические нарушения;
• наследственная предрасположенность;
• расширение вен в области яичек и семенного канатика (мужское бесплодие, степени бесплодия зависят от функциональности этих органов, а при их перегреве качество спермы ухудшается);
• травмирование половых органов;
• воспалительные заболевания, а также венерические инфекции;
• преждевременная эякуляция или нарушение эрекции;
• прохождение курса химиотерапии;

Спровоцировать ухудшение репродуктивной способности способны вредные привычки. Однако, развития бесплодия можно избежать, если заняться ранней профилактикой у мужчин.

Профилактику бесплодия у женщин надо проводить еще с детских лет. Следует соблюдать такие меры.

1. Не вступать в половые связи с разными партнерами, так как они могут быть заражены венерическими инфекциями или даже ВИЧ.
2. Соблюдать ежедневную личную гигиену (это же касается и половой близости).
3. Не заниматься сексом во время месячных (выделения в этом случае забрасываются обратно в матку, провоцируя развитие эндометриоза).
4. Отказаться курения, не злоупотреблять алкоголем.
5. Лекарственные препараты использовать только после назначения врачом в показанной дозировке.
6. Правильно и сбалансировано питаться.
7. Избегать стрессовых ситуаций, сильных эмоциональных всплесков или нервных напряжений.
8. Своевременно лечить любые инфекционные и воспалительные заболевания репродуктивной системы — они могут вызвать маточное бесплодие.
9. Избегать слишком интенсивных физических нагрузок, так как они дестабилизируют менструальный цикл.
10. Не проводить спринцевания химическими веществами.
11. Принимать назначенные врачом контрацептивы, чтобы предупредить нежелательную беременность и снизить риск осуществления аборта.
12. Регулярно проходить осмотр у гинеколога (дважды в год).

Не стоит допускать чрезмерного повышения или потери массы тела. Это провоцирует гормональный дисбаланс и бесплодие. В качестве профилактики можно также ограничить потребление кофе на протяжении дня.

Тут профилактика бесплодия и заболеваний женских половых органов заключается в предупреждении таких патологий, как корь, скарлатина, краснуха, грипп, дифтерия. Все они негативно влияют на формирование фолликулов, нарушается формирование полового аппарата с детства. Для этого детям делаются прививки. Следует также укреплять иммунитет, применяя витамины с микроэлементами.

Важно лечить воспалительные процессы в коре головного мозга, избегать черепно-мозговых травм. Родителям девочки нужно обратить внимание на формирование ранних половых признаков, задержку менструального цикла. Если первое кровотечение началось у девочки в 10 или 16 лет – ее нужно показать врачу. Такая ситуация может свидетельствовать о проблемах с развитием репродуктивной системы, что в позднем возрасте приведет к бесплодию.

Нужно насторожиться, если выделения слишком сильные или скудные, менструации идут нерегулярно, сопровождаются сильной болью. В подростковом возрасте девушки предъявляют жесткие требования к своей внешности и сидят на разных диетах, чего делать категорически нельзя. Это приводит не только к потере жировой ткани, но и к сужению матки и уменьшению яичников. О наступлении беременности в таком случае речь не идет. Родители в этом случае несут полную ответственность за профилактику бесплодия.

Не стоит разрешать девочкам вступать в половую связь до 18 лет, так как половой аппарат у них до этого времени до конца не сформирован. Тут важна разъяснительная работа родителей.

Профилактика женского бесплодия важна не только в молодом возрасте. Возможность зачатия может утрачиваться, даже если у пары уже есть дети. Ранняя менопауза – это вред для здоровья. К ней может привести недостаточно качественное лечение заболеваний яичников и маточных труб, наличие полипов в матке, которые часто развиваются в возрасте старше 40 лет.

Чтобы сохранить возможность зачатия, нужно соблюдать такие профилактические меры:

• избегать негативных эмоций, сторониться стрессов;
• соблюдать ежедневную интимную гигиену;
• после 35 лет желательно сохранять регулярную половую жизнь, но частая смена партнеров противопоказана;
• периодически проходить осмотр у гинеколога, даже если ничего не болит;
• контролировать процесс овуляции и при его затухании проконсультироваться с врачом.

Необходимо тепло одеваться в холодную погоду и не находиться длительное время на сквозняке.

Проблемы с зачатием ребенка нередко возникают и у мужчин. Этому способствует недостаток количества сперматозоидов, которые отличаются хорошей подвижностью и несут неповрежденный генетический материал. Чтобы точно узнать причину такой ситуации, нужны результаты обследования, анализов, тем самым выполняя профилактику бесплодия у мужчины.

Предупредить мужское бесплодие можно, если соблюдать такие рекомендации:

• избегать беспорядочных половых связей;
• следить за рационом питания, исключить из него пиво и другие спиртные напитки (они плохо влияют на качество сперматозоидов);
• подвергать тело ежедневным физическим нагрузкам (они должны быть умеренными);
• отказаться от сигарет;
• не принимать горячие ванны слишком часто;
• избегать стрессовых ситуаций, чрезмерного нервного напряжения;
• не закладывать ногу за ногу в положении сидя;
• с раннего детства проводить профилактику паротита при помощи вакцинации;
• вовремя сдавать анализы при профилактическом осмотре, а также в случае появления симптомов инфекционной патологии;
• отдых и сон должен быть полноценным;
• вести регулярную половую жизнь со стабильным партнером (каждые 3-5 дней).

И женщине, и мужчине нужно следить за своей массой тела. Нарушению репродуктивной функции способствует ношение тесного белья, поэтому от него лучше отказаться.

В зависимости от причины бесплодия, пациенту назначается лечение. Оно может быть медикаментозным или оперативным. В некоторых случаях достаточно откорректировать массу тела и образ жизни, чтобы получить возможность зачать малыша (улучшается работа эндокринной системы).

Успех повышается при своевременном лечении инфекционных болезней у супругов, пока они не дали осложнений. Если проблема естественной беременности остается, то паре могут быть назначены такие процедуры:

• стимуляция овуляции медикаментозными препаратами;
• инсеминация (вероятность успеха — 17%) – прямой перенос спермы партнера или донора в полость матки;
• экстракорпоральное оплодотворение (40-60%) – самый эффективный метод, когда женщине подсаживается уже готовый эмбрион;
• применение донорской яйцеклетки;
• использование услуг суррогатной матери.

Такие способы применяются, если шансы на естественное оплодотворение резко снижаются.

Пациентам строго запрещено использовать препараты для стимуляции процесса овуляции самостоятельно. Так можно нарушить функциональность эндокринной системы еще больше, спровоцировать синдром истощения яичников. Не стоит применять разные народные средства, если причина бесплодия не установлена.

Если проблема бесплодия спровоцирована нарушением менструального цикла, нервным потрясением, то справиться с ней помогут нетрадиционные методы профилактики и лечения.

1. Гомеопатические средства. Больному предлагаются экстракты трав и минералы. Некоторые из них назначаются для стимуляции процесса овуляции, а другие успокаивают нервную систему.
2. Иглоукалывание.
3. Рефлексотерапия. Тут производится массаж активных точек, расположенных на стопах. У пациента улучшается самочувствие, нормализуется функциональность репродуктивной системы.

Нельзя полагаться только на альтернативные способы терапии. Они будут эффективными только в комплексной схеме лечения.

Идти к специалисту необходимо уже тогда, когда в течение полугода совместной жизни у пары не получается забеременеть естественным путем (при условии, что не использовались контрацептивы). Следует проконсультироваться со специалистом, если обнаружились признаки инфекционного или воспалительного процесса, затрагивающего репродуктивную систему.

Обследоваться придется у разных специалистов: уролога, гинеколога, андролога, эндокринолога, репродуктолога. Необходимы консультации других врачей: терапевта, венеролога, диетолога. Только комплексным способом в большинстве случаев удается победить бесплодие. Но своевременная профилактика бесплодия является более «благодарным мероприятием».

источник

06.02.06 – Ветеринарное акушерство и биотехника репродукции животных

на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Научный руководитель:

доктор ветеринарных наук, Гнездилова Л.А.

Москва — 2012 Содержание Введение 1.

2.1 Основные нарушения воспроизводительной функции у овцематок

2.2 Процесс родов у овец и патология родового акта

2.3 Этиология послеродовых осложнений у овцематок

2.4 Методы лечения овец, больных эндометритом

2.5 Применение лекарственных препаратов для стимуляции адаптогенных возможностей организма животных

2.6 Использование адаптогенных лекарственных средств на основе гуминовых веществ

2.7 Адаптогенное, стресс-корректирующее действие гуминового препарата лигфол

2.8 Заключение Собственные исследования 3.

3.1 Материал и методика работы

3.2 Этиологические факторы бесплодия овцематок, основные нарушения воспроизводительной функции

3.3 Контроль состояния воспроизводства овец на основании проведения акушерско–гинекологической диспансеризации

3.4 Применение адаптогена стресс-корректора Лигфол для профилактики патологии послеродового периода овцематок

3.5 Общепрофилактические и специальные мероприятия при симптоматическом бесплодии овец

3.6 Лечение овец при послеродовых эндометритах Обсуждение результатов собственных исследований 4.

Практические предложения 6.

1. Введение Актуальность темы.

Одной из причин симптоматического бесплодия у овец является патология беременности, родов и послеродового периода. Нарушение технологии содержания, кормления, дисбаланс параметров микроклимата животноводческих помещений, перегруппировки, зооветеринарные мероприятия являются серьезными стресс-факторами для суягных овец.

Инфекционные болезни, поражающие органы воспроизводства, также оказывают большое негативное воздействие на беременных животных.

Конечный результат всего этого – бесплодие маточного поголовья и заболеваемость молодняка. В настоящее время нет еще единого мнения об эффективности применения методов профилактики акушерскогинекологических заболеваний у овец. Для контроля воспроизводства необходимо тщательно разбираться в причинах бесплодия и разрабатывать научно-обоснованные схемы лечебно-профилактических мероприятий, направленные на восстановление воспроизводительной функции овцематок и их высокой продуктивности.

Цель работы – изучение этиологии симптоматического бесплодия овец, проведение комплексной системы диагностики патологии воспроизводительной функции, общей и специфической профилактики.

Выявить основные этиологические факторы возникновения 1.

симптоматического бесплодия у овцематок.

1.1. Установить влияние воздействия факторов внешней среды на организм суягных овцематок (параметров микроклимата, технологии содержания, кормления, ветеринарно-санитарных мероприятий).

2.1. Воздействие возбудителей инфекции на воспроизводительную функцию овец.

Провести контроль состояния воспроизводства животных на 2.

основании проведения акушерско-гинекологической диспансеризации овцематок в различные физиологические периоды их жизни (период половой охоты, в период суягности, послеродовой период) в условиях хозяйств Московской области.

Провести профилактические мероприятия.

3.1. Применить препарат Лигфол для профилактики акушерскогинекологической патологии родов и послеродового периода у овцематок и повышения естественной резистентности организма.

3.2. Провести систему мероприятий по профилактике инфекционных заболеваний с поражением репродуктивных органов, включающую комплексную вакцинацию овцематок с использованием препарата Лигфол и применение дезсредства Дезконтен.

Разработать схему и провести сравнительные методы лечение 4.

овцематок при послеродовых эндометритах.

Научная новизна.

Установлены основные этиологические факторы нарушения 1.

воспроизводительной функции у овцематок, приводящие к бесплодию (в условиях СХП МО и ЮФО).

Проведена комплексная система контроля воспроизводства овец 2.

путем проведения акушерско-гинекологической диспансеризации с учетом различных периодов их физиологического состояния в условиях сельскохозяйственных предприятий Московской области.

Испытан препарат – адаптоген стресс-корректор Лигфол для 3.

профилактики патологии родов и послеродовых осложнений у овец.

Разработана система мероприятий по профилактике 4.

симптоматического бесплодия у овец с использованием нового дезсредства Дезконтен и комплексной вакцинации с применением препарата Лигфол.

Практическая значимость.

В результате проведенных исследований ветеринарным специалистам 1.

для практического использования предложена система мероприятий по контролю воспроизводства овец с применением акушерско-гинекологической диспансеризации.

Для практического использования рекомендовано проведение 2.

мероприятий по профилактике симптоматического бесплодия с использованием адаптогена стресс-корректора Лигфол.

Предложено проведение специфической профилактики 3.

инфекционных болезней овец с поражением репродуктивных органов путем использования вакцины в сочетании с препаратом Лигфол. А также проведение дезинфекции овцеводческих помещений с применением дезинфицирующего средства Дезконтен.

Практическим ветеринарным специалистам рекомендованы 4.

эффективные схемы лечения овец с послеродовым эндометритом.

Апробация работы.

Основные результаты проведенных исследований докладывались и обсуждались на:

Международной научно-практической конференции «Проблемы и 1.

перспективы овцеводства и козоводства» (г.Ставрополь, 2005).

Всероссийской научно-практической конференции «Итоги и 2.

перспективы применения гуминовых препаратов в продуктивном животноводстве, коневодстве и птицеводстве» (г.Москва, 2006).

Международной научно-практической конференции 3.

«Нанобиотехнологии в сельском хозяйстве» (г.Москва, 2008).

Материалы исследований по теме диссертации изложены в 4.

методических рекомендациях «Контроль воспроизводства овец и профилактика симптоматического бесплодия» (г.Москва, 2009).

Международной научно-практической конференции «Современные 5.

проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц»

Международной научно-практической конференции «Современные 6.

проблемы, перспективы и инновационные тенденции развития аграрной науки (г.Махачкала, 2010) Публикация результатов исследований.

По теме диссертационной работы опубликовано восемь научных статей и методические рекомендации.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 137страницах компьютерного текста, иллюстрирована 16 таблицами, 9 фотографиями и 6 рисунками.

2. Обзор литературы

Введение В настоящее время в Российской Федерации всё больше внимания уделяется развитию одной из важнейших отраслей агропромышленного комплекса – овцеводству.

Помимо выращивания пород шерстного и мясо-шерстного направления, тонкорунных и полутонкорунных овец в ряде регионов России разработаны и осуществляются целевые программы создания мясного овцеводства. Они предусматривают скрещивание отечественных мясных пород с австралийскими мериносами, текселями, остфризами, полдорсетами. Планируется дальнейший рост поголовья овец.

Минсельхоз России и Россельхозакадемия разработали и утвердили концепцию развития животноводства страны на период до 2010г. Она основывается на результатах исследований и анализе состояния животноводства, обобщении достижений науки и передового опыта. В концепции сформулированы основные пути выхода отрасли из кризиса. Ее реализация обеспечит стабилизацию, а затем динамичный рост численности овец, производства шерсти, другой продукции отрасли (В. Шапочкин, 2002).

Процесс интенсификации этой важной отрасли во многом зависит от правильной организации воспроизводства животных в овцеводческих хозяйствах, что позволит увеличить производство животноводческой продукции и сырья для населения.

Однако серьезной проблемой в реализации задач по увеличению поголовья овец и повышения их продуктивности является низкая оплодотворяемость и высокий процент бесплодия маточного поголовья, в частности симптоматического, т.е. возникающего в результате развития патологических процессов в половых органах животных.

А.П. Студенцов (1999) писал: «Бесплодие животных наносит огромный ущерб, превышающий убытки, наносимые всеми другими заболеваниями животных. Вот почему над проблемой борьбы с бесплодием работают многие специалисты всех стран мира». Однако следует отметить, что и в настоящее время она решается по-разному и подчас не находит действенных методов профилактики и полного искоренения.

Одной из причин симптоматического бесплодия у овцематок является патология родов, которая встречается у 4,9 – 34% животных. Нарушение технологии содержания и кормления, несоответствие нормативным данным параметров микроклимата животноводческих помещений, зооветеринарные мероприятия являются серьезными стресс-факторами для беременных овец. На фоне нарушения нейро-гуморального регулирования, обмена веществ, процесса кроветворения, иммунной защиты, снижения естественной резистентности организма развиваются акушерско-гинекологические патологии. Это — аборты, патология родов, задержание последа, субинволюция матки, развитие внутриутробной гипоксии молодняка.

С целью решения этих проблем в период беременности и родов овцематок нами проводились испытания адаптогена стресс-корректора Лигфол. Это композиционный препарат, основным действующим началом которого являются гуминовые кислоты. В состав препарата входят: гуминовые кислоты, натрия пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная апирогенная вода. Это стерильный препарат в форме инъекционного раствора для парентерального применения.

В России изучение применения гуминовых препаратов в качестве кормовой добавки для сельскохозяйственных животных начаты в 60х годах и продолжаются до настоящего времени. Накоплен большой экспериментальный материал, подтверждающий, что гуминовые вещества обладают широким спектром биологической активности, оказывая воздействие на обменные процессы в организме животных и человека. Они поставляют микроэлементы, обогащая иммунную систему, что дает животным возможность эффективно противостоять болезням. Гуминовые препараты применяются в качестве биологических стимуляторов при выращивании сельскохозяйственных животных. Активизируют рост и развитие, повышают продуктивность, снижают заболеваемость и отход молодняка (В.С. Бузлама, 2006).

Установлено, что гуминовые вещества влияют на регуляторные системы клетки. Механизм их фармакологического действия связан с интенсификацией синтеза белка и иммунореактивных факторов клетками организма животных и птиц.

Гуминовые, фульвокислоты, пиримидины, аминокислоты влияют на аденилатциклазную систему клетки и систему ферментов, ответственных за синтез олигоаденилата – медиатора действия интерферона. В частности их действие опосредуется одновременной активацией АЦ (аденилатциклазы) и ингибированием ФДЭ (фосфодиэстеразы), что приводит к усилению синтеза цАМФ (аденозинмонофосфатазы). Повышение внутриклеточной концентрации цАМФ может приводить к биологическим эффектам в зависимости от типа клетки и её состояния в данный момент. Происходит регуляция ферментов углеводного и жирового обмена, иммунных реакций, факторов естественной резистентности организма (Д.Н. Уразаев, 1986).

В настоящее время нет еще единого мнения об эффективности применения методов профилактики акушерско-гинекологических заболеваний у овец. Для контроля воспроизводства необходимо тщательно разбираться в причинах бесплодия и разрабатывать научно-обоснованные схемы лечебнопрофилактических мероприятий, направленные на восстановление воспроизводительной функции овцематок и их высокой продуктивности.

Опыт применения препарата Лигфол в скотоводстве, свиноводстве, коневодстве, птицеводстве показал широкую возможность его использования в схемах лечебно-профилактических мероприятий, для повышения резистентности, продуктивных и племенных качеств сельскохозяйственных животных и птицы.

1.1 Основные нарушения воспроизводительной функции у овцематок Аборт — прерывание беременности с последующим полным или частичным рассасыванием зародыша, либо изгнанием из половых органов мертвого или незрелого плода (В.А. Акатов, Г.А. Кононов и др., 1977; А.П. Студенцов, В.С.

Шипилов, В.Я. Никитин и др., 1999).

Экономический ущерб от абортов складывается из потери ожидаемого приплода, падежа овцематок и прекращения или сильного снижения молочной продуктивности. Кроме того, после абортов часто возникают различные осложнения, которые во многих случаях обусловливают бесплодие овцематок, а иногда и гибель животных (В.Г. Шаманов, 1954; Т. Ганчев, 1960; П. Маринов, 1962; С.Г. Казарян, 1967; К. Амануллаев,1969; А. Актаев, 1969; А.Н. Степанов, 1974; Ч.А. Рзаев, 1976; Р.А. Огурцов, 1980; А.И. Симонян, 1980; И.И.

Соколовская, 1988; Г.В. Небогатиков, 1993; П.Д. Устарханов, М.Г. Халипаев, 2003; Berri M. et al., 2002 и др.).

Аборты овец пока еще недостаточно изучены. Наиболее научная и приемлемая классификация абортов сельскохозяйственных животных предложена А.П. Студенцовым. Он делит аборты по их этиологии на три основных вида: 1) незаразные 2) инфекционные 3) инвазионные. Эта классификация приемлема и для овец (Ч.А. Рзаев, 1976) и согласно ей инфекционные аборты подразделяются на идиопатические и симптоматические.

К идиопатическим инфекционным абортам относятся бруцеллезные аборты коров, овец и свиней, паратифозные аборты кобыл и овец, кампилобактериозные – коров и овец. К симптоматическим инфекционным абортам относятся: инфекционная анемия, туберкулез и другие инфекционные заболевания матери.

И.А. Бочаров, 1956; Е.Т. Михайленко, 1985; М.В. Федорова, 1986; В.Е.

Радзинский, 1987; Г.М. Савельева, 1991; Д.Д. Логвинов, 1993; С.А. Власов, 2000; считают, что аборты и эмбриональная смертность возникают по причине плацентарной недостаточности, возникающей в результате различных отклонений в течении беременности. В 80% случаев этому способствует попадание патогенной и условно-патогенной микрофлоры в гениталии самок.

Инфекционные аборты у овец изучали и описывали с 1956 года А.И.

Лопырин и Н.В. Логинова. По их сообщениям, аборты являются одной из причин яловости овцематок. В первую очередь причиной заразного заболевания является бруцеллез, который опасен и для человека. В организме микробы скапливаются в лимфатических узлах, особенно в тех, которые расположены вблизи половых органов и вымени. Во время суягности они проникают в слизистую оболочку родовых путей, быстро размножаются и, нарушая связь матки с плацентой, вызывают аборт. Чаще всего аборты на почве бруцеллеза происходят на третьем месяце суягности. Во время аборта вместе с плацентой и плодовыми водами выделяется большое количество бруцеллезных микробов.

Приводит к абортам и яловости паратифозная инфекция. Попавшие в организм суягной овцы микробы проникают в матку, нарушают связь её с плацентой и вызывают аборт. Выкидыши, как правило происходят за 2-3 недели до окота. Абортированные плоды обладают шерстным покровом и часто бывают уже разложившимися.

По наблюдениям Ч.А. Рзаева (1976) в овцеводстве чаще всего встречаются аборты с рассасыванием зародыша, с изгнанием недоноска и изгнанием мертвого плода. Причины этих абортов обычно инфекционные (бруцеллез, паратиф, вибриоз, листериоз, лептоспироз), вирусные и инвазионные заболевания, неправильное кормление беременных маток, различные травмы брюшной стенки и болезни или ненормальное развитие половой системы овцематки. Во всех случаях аборт возникает в результате нарушения нормальных взаимоотношений между плодом и матерью вследствие ненормального состояния плода, его оболочек, заболеваний женского полового аппарата, а также других органов и организма матери в целом.

По сообщению автора, в условиях овцеводческих хозяйств особенно опасны инфекционные аборты, т.к. они быстро распространяются и приносят большой ущерб. Во многих хозяйствах встречаются бруцеллез, паратиф, кампилобактериоз, лептоспироз, листериоз овец, вызывающие массовые аборты и различные акушерско-гинекологические болезни (задержание последа, воспаление матки и т.п.), приводящие к бесплодию. Немало овец гибнет от этих болезней (А. Гордон, 1988).

В.В Михайленко (1999, 2000) при изучении клинико-морфологических особенностей проявления хламидиоза овец в его ассоциации с микоплазмозом в хозяйствах Ставропольского края и Калмыкии регистрировал массовые аборты маток, преимущественно во второй период суягности. По данным автора абортировали от 5 до 20% животных. Количество абортов напрямую зависело от количества положительно реагирующих овец в хозяйстве.

У.М. Нарымбетова, Б.Т. Толысбаев (2001) изучали инфекционную патологию овец в хозяйствах Казахстана. Установлено, что за последние годы наиболее широкое распространение среди инфекционных болезней овец имеют сальмонеллез, бруцеллез и хламидиоз, представляющие потенциальную опасность для здоровья человека и животных. Эпизоотологические вспышки абортогенных инфекций овец нередко протекают в ассоциативной форме. Это приводит к массовому заболеванию животных (большое количество абортов), трудностям диагностики и лечения.

К.С. Шманов и др. (2002) проводили исследования по эпизоотологии, диагностике и специфической профилактике абортогенных инфекций овец в хозяйствах республики Казахстан. Установлено, что инфекционная патология репродуктивных органов овцематок обусловливается такими возбудителями, как кампилобактерии, хламидии и сальмонеллы, проявляется эмбриональной смертностью зародыша, недополучением приплода, массовыми ранними и поздними абортами, бесплодием маточного поголовья.

1.2 Процесс родов у овец и патология родового акта Роды (Partus) – физиологический процесс, в результате которого зрелый плод, плодные оболочки вместе с плодной частью плаценты и околоплодными водами выводятся из полости матки (Г.А. Кононов и др., 1977; А.Г. Нежданов 1991; А.П. Студенцов и др., 1999;).

В норме у овец роды начинаются после полного завершения беременности.

Строение таза у овец в основном обеспечивает легкость родового акта, поэтому у них сравнительно редко встречаются трудные роды. Трудные роды возникают или при слишком больших плодах, или при неправильном положении ягненка в родовых путях (Ч.А. Рзаев, 1976).

В конце беременности, особенно за 5-10 дней до начала родов, у овец появляются предвестники родов. За 3-4 дня до родов заметно западание крестца, сильный отек половых губ, увеличение объема молочной железы, появление молозива. За 12-24 часа до начала родов овцематка начинает беспокоится, часто при этом блеет, уединяется, как будто подготавливает “гнездо” для родов.

Процесс родов у овец слагается из трех стадий:

подготовительная стадия, или раскрытия шейки матки;

2) стадия изгнания последа.

3) Каждая стадия сопровождается соответствующими потугами. Стадия раскрытия шейки матки длится от 3 до 30 часов и проходит без особых клинических признаков. Стадия выведения плода продолжается 5-30 минут. В это время овцы очень беспокоятся, переступают ногами, стонут, оглядываются на живот и блеют. Выводится плод из полости матки благодаря сокращениям мускулатуры её и брюшного пресса. При многоплодной беременности плоды появляются с интервалом от 5 минут до одного часа. Стадия изгнания последа непродолжительная — от 20 минут до 2 часов. Чаще послед отделяется в течение первого часа после выведения плода. С изгнанием последа завершаются роды и начинается послеродовой период (Ч.А. Рзаев, 1976; M.A. Sharafeldin, 1971; L.S.

Wyk, 1972; J. Robimson, 1979; E.L. Harman, 1980; G. P. Thorburn, 1984;).

Патологические роды возникают под влиянием многих причин. Часто они являются следствием расстройств сократительной функции матки и брюшного пресса (слабые или слишком сильные схватки и потуги). Они наблюдаются также при аномалии вульвы и влагалища, неполном раскрытии и спазмах шейки матки, при скручивании матки, водянке плодных оболочек и маловодии, при водянке и уродствах плода. Особенно часто патологические роды являются следствием неправильных расположений и членорасположений плода при родах и несоответствии размеров плода или отдельных его частей и размеров тазовой полости матери (В.А. Павлов, 1969; В.А. Акатов, 1977; L.P. Cahill, 1976; F.W. Baser, 1983; F.J. Grommers, 1985).

Серьезной причиной патологии родов у овец является воздействие на организм животных возбудителей инфекционных заболеваний или продуктов их жизнедеятельности. Указанное нарушение встречается, по наблюдениям Н.Я. Алиева (1976), в 14,4-15,9% случаев. По J. George (1976) в Австралии у овец в 34% случаев наблюдали затрудненные роды. Однако анализ специальной литературы показал не изученность вопроса конкретной взаимосвязи специфики нарушений в организме матери с воздействием возбудителей инфекционных заболеваний.

Частым проявлением патологических родов у овец является нераскрытие шейки матки. Это заболевание встречается у овцематок в Англии, Германии, Швейцарии, Польше и других странах (А.Н. Лавор, 1987; Gunn R.G., 1968;

J. Maxwell, 1970; K.P. Mc Natty, 1972; R.D. Mc. Sporran, 1977; Hils JeanLouis, 1980;). По данным George J.M. (1976), K.D. Mc. Sporran, Buchanan R., E.D. Fielden (1977) патология регистрируется у 6-37% животных в зависимости от породы и возраста. В.А. Карпов (1984) сообщает о том, что в отдельных хозяйствах на долю нераскрытия шейки матки приходится до 15-25% всех случаев патологических родов. А.Н. Лавор (1986), проводя анализ 14661 окота в овцеводческих хозяйствах Белоруссии в период с 1982 по 1984гг., показал, что нераскрытие шейки матки регистрируется у 3,8-13,8% овцематок. В 1987 автором было учтено 1116 ягнений овец, среди которых заболевание наблюдалось у 76 голов, что составляет 6,8%.

Наиболее часто эта патология отмечалась в январе (55,7%), которая снижалась в два раза в феврале (25,1%) и незначительное количество случаев приходилось на декабрь и март, соответственно, 8,7 и 10,5% (А.Н. Лавор, 1986).

Продолжительность суягности у овцематок с нераскрытием шейки матки была на 2,2 дня короче в сравнении с овцематками, ягнившимися в физиологические сроки. Автор регистрировал заболевание у овец породы прекос, тогда как у овцематок романовской породы это заболевание не наблюдалось.

Нераскрытие шейки матки проявлялось в одинаковой степени у овцематок всех возрастов и в 82% случаев ему предшествовало выпадение влагалища, возникающее спонтанно, как правило, за 10-12 дней до родов, иногда раньше, а в ряде случаев непосредственно перед родами (А.Н. Лавор, 1987).

Этиологические факторы этого заболевания окончательно не выяснены.

Наиболее частой причиной нераскрытия шейки матки является нарушение её иннервации, происходящее в результате воспаления, возникающего на почве переболевания овцематок различными инфекционными заболеваниями.

Определенную роль в патогенезе заболевания играет неблагоприятное воздействие факторов внешней среды, снижающее естественную резистентность организма животных (А.Я. Губаревич, 1952; В.А. Карпов, 1984;

А.Н. Лавор, 1984; J.L. Hils, 1980; J. Shulz, 1985; Maxwell, 1970; R.G. Gunn, 1969).

Я.Г. Губаревич (1952) сообщает, что нераскрытие шейки матки возникает вследствие недостаточной инфильтрации её мышечных слоёв. Заболевание может быть обусловлено сильным рубцовым стягиванием ткани в связи с травмированием при оказании помощи или сильным натяжением плода, обусловившим разрыв тканей шейки.

По В.А. Карпову (1984), при заболевании, в отличие от нормальных родов, понижается содержание в тканях шейки матки воды и не происходит достаточного разрыхления фибриллярного основного (межклеточного) вещества.

К нераскрытию шейки матки предрасположены овцы преимущественно первородящие, многоплодные, с большой массой отдельных плодов (с преобладанием баранчиков в приплоде), содержащиеся до ягнения на пышных обильных пастбищах, ожиревшие животные или определенные породы овец (мясные) и другие.

Автор опровергает прежние представления, согласно которым причина указанной дисфункции шейки матки приписывалась слабым сокращениям мускулатуры матки, обусловленным, например, перерастяжением стенок матки при многоплодной беременности.

Многоплодная беременность может играть роль способствующего фактора, поскольку она предрасполагает к нарушению обмена веществ. По исследованиям В.А. Карпова (1984) у овец с нераскрытием шейки матки отмечалось понижение содержания кальция в сыворотке крови. Тот факт, что рассматриваемая патология у овец не регистрируется в некоторых стадах, областях или странах (например, в Перу), автор объясняет влиянием внешних факторов, как предпосылкой для возникновения этого заболевания.

А.Н. Лавор (1985) для изучения этиологии этой патологии проводил изучение гормональных показателей при нераскрытии шейки матки у овец, выявлял динамику и роль стероидных гормонов (прогестерона, эстрадиола, кортизола) и простагландина Ф2 при нормальном течении родов и при патологии.

Было установлено, что у овцематок с выпадением влагалища за 15-10 и 5-3 суток до предполагаемого окота содержание прогестерона в крови резко понижено (в 2,69-3,36 раза) при относительно высоком уровне эстрадиола 17бета (в 1,2-1,4 раза) и кортизола (в 4,1-5,2 раза) по сравнению с нормально протекающей беременностью. У овец с нераскрытием шейки матки не происходит к началу родов резкого снижения в крови концентрации прогестерона, повышения уровня эстрадиола-17 бета, кортизола и простагландина Ф2, свойственных нормальному течению родов.

А.П. Студенцов, В.С. Шипилов (1999) считают, что в основе нераскрытия шейки матки лежат патологические изменения в половом аппарате или поражение нервных элементов возникающие вследствие перенесенных воспалительных процессов разной этиологии, чаще всего, инфекционной.

Некоторые исследователи (J.L. Hils, 1980; Shulz, 1985; А.Н. Лавор, 1987;

М.П. Чернышева, 1998) утверждают, что главенствующая роль в этиологии нераскрытия шейки матки принадлежит нарушению минерального и гормонального обменов.

В.А. Акатов и др. (1977) считают, что наиболее частой причиной нераскрытия шейки матки является дискоординация сократительной функции матки, при которой сокращение её рогов и тела не способствуют раскрытию шейки матки. Указанная патология возникает при нарушениях её иннервации, обусловленных воспалением и другими патологическими процессами, возникающими на почве переболевания различными инфекционными заболеваниями.

1.2 Этиология послеродовых осложнений у овцематок Послеродовой период, границы которого порой не могут точно определить, представляет собой своеобразный переходный этап от беременности и родов к новому состоянию организма матери до следующей беременности. Процессам гипертрофии, гиперплазии, гиперемии и пролиферации во время беременности противостоят явления атрофии, дегенерации, распада и рассасывания в послеродовом периоде. Многие из указанных процессов считаются физиологическими для послеродового периода, тогда как обнаружение их вне этого периода свидетельствовало бы о глубоких патологических нарушениях в организме. Процессы обратного развития после родов в отношении своей интенсивности и темпов зависят от ряда факторов, среди которых играют исключительную роль возраст, количество предшествующих родов, течение беременности и родов, болезни, кормление и содержание животного в период беременности и др. Отдельные из указанных факторов способны удлинять или сокращать срок послеродового периода (Ч.А. Рзаев, 1976).

К сожалению, до последнего времени в овцеводческих хозяйствах все еще мало обращают внимание на течение послеродового периода и особенно на послеродовую патологию половых органов овец. Больше того, среди многих практиков-овцеводов и научных работников распространено неправильное и необоснованное мнение, что послеродовые заболевания у овец встречаются лишь в единичных случаях и не оказывают решающего влияния на дальнейшую плодовитость.

Одним из осложнений родового акта у овец является задержание последа.

Оно занимает особое место в акушерской патологии. Задержание последа у овец в некоторых хозяйствах Узбекистана встречается по Ш.М. Гузиеву в 4,9а по Н.А. Алиеву (1976) – в 15,9-16,7% случаев. С.Г. Казарян (1967) регистрировал задержание последа у 2-8% овец. Единого мнения о продолжительности последовой стадии нет. По мнению И.Я. Чистякова (1973), И.Я. Чистякова, П.Е. Ким (1983), о задержании последа можно говорить в том случае, если он не отделился в течение 4 часов; по В.А. Карпову (1984), Г.В.

Зверевой и др. (1985) — 5 часов; по Я.Г. Губаревичу (1949), Ч.А. Рзаеву (1969, 1976), Н.Д. Мухамедову (1979)- в течение 6 часов после рождения ягненка.

Я.Г. Губаревич (1949), Ч.А. Рзаев (1959, 1969, 1976), В.Е. Старков и др.

(1972), И.Я. Чистяков (1973), В.А. Карпов (1984) причиной задержания последа считают недостаточные сокращения матки (гипотония) или отсутствие сокращений (атония). Предрасполагающими факторами, как отмечают эти авторы, могут быть неполноценное кормление, истощение или ожирение животного, отсутствие моциона в период беременности, перерастяжение матки при большом количестве плодов, утомление роженицы вообще и миометрия в частности после продолжительного периода выведения плода (плодов);

слишком плотное соединение ворсинок с криптами, что наблюдается при отечности их тканей и воспалительных процессах в результате инфекционных заболеваний; механические препятствия для изгнания последа: сужение или закрытие канала шейки матки или отверстий рогов в местах их перехода в тело матки, перегибы и инвагинация матки.

По мнению Т. Ганчева (1960), П. Маринова (1962), Т.А. Мамедова (1964), Н.Т. Зиновьевой (1972), В.Л. Ковалева (1975), Г.А. Кононова (1977), В.К.

Ивахненко (1980) возникновению задержания последа у животных способствуют аборты инфекционной этиологии, происходящие по причине гнойно-катарального, фибринозного, геморрагического или гангренозного плацентита.

Литературные данные по бесплодию сельскохозяйственных животных свидетельствуют о том, что заболевания половых органов у овец и, в особенности вопросы инфекционной патологии, изучены крайне недостаточно.

Одним из наиболее частых заболеваний полового аппарата у овец являются послеродовые эндометриты.

По данным В.Г. Шиманова (1954, 1957, 1982), в некоторых хозяйствах более половины (55,79-55,8%) из числа обследованных животных остаются бесплодными вследствие хронических эндометритов и вагинитов.

З.М. Шахмарданов (1964, 1968), исследовавший овцематок, сдаваемых на мясокомбинат, наблюдал, что у 1,29% животных наблюдалось поражение яичников, у 0,73% овцематок были воспалительные процессы матки. При проведении исследований непосредственно в хозяйстве он установил, что 1,6овцематок к общему числу маточного поголовья в отарах остаются бесплодными на почве эндометритов и вагинитов.

S.M. Sokkar et al (1980) из 100 обследованных после убоя овец выявил эндометриты в 44 случаях.

З.А. Шахмарданов и др. (1968) сообщают, что из числа бесплодных овец у 28,1% встречаются хронические эндометриты и вагиниты.

По сообщениям Н.Я. Алиева (1976), Ш.М. Гузиева (1976), в хозяйствах Узбекистана послеродовые заболевания у овец составляют 3,8-17,5%.

Послеродовые эндометриты возникают в результате травмирования эндометрия и внедрения различных микроорганизмов через родовые пути в матку при патологических родах, субинволюции матки (Ч.А. Рзаев, 1976; В.А.

Бактериологические исследования выделений из матки при воспалении её показали, что при этом выявляется смешанная инфекция: стрептококки, стафилококки, гноеродная палочка, кишечная палочка, диплококки, сальмонеллы (Ф.Т. Панасенко, 1957; Ч.А. Рзаев, 1974, 1976; S.V. Sokkar et al., 1980). Немаловажное значение имеют предрасполагающие факторы, снижающие резистентность организма: неполноценное кормление, отсутствие моциона в период беременности и после родов, антисанитарные условия содержания и др. (H. Sandbu, 1956; А.М. Силаев, 1971; Ф.З. Меерсон, 1981;

В.А. Карпов, 1984; И.Н. Никитченко, 1988; К. Петров, 1988; Н.С.

При проведении патолого-гистологической диагностики послеродовых эндометритов у овец Ч.А. Рзаев (1976) установил, что при острых воспалениях в матке происходят значительные изменения: отечность, увеличение объема, асимметрия рогов матки, гиперемия и набухание слизистой оболочки, увеличение размеров маточных карункулов, иногда заметна задержка развития желтого тела, наличие воспалительных пузырьков в яйцепроводах, сращения и рубцевания в слизистой оболочке матки и яйцепроводах. Сильно выражена клеточная инфильтрация всех слоев матки, в слизистой оболочке встречаются атрофические изменения маточных желез и стенок мелких кровеносных сосудов, вокруг них имеется клеточная инфильтрация. В слизистой оболочке яйцепроводов отсутствует мерцательный эпителий, а иногда выражен некроз. В яичниках задерживается желтое тело, встречается атрезия фолликулов, отсутствие яйцеклетки. Характерные изменения обнаруживаются в половых органах овец при хронических воспалительных процессах. В таких случаях обнаруживаются уплотнения маточной стромы, застой крови, очаговая инфильтрация с полиморфноядерными лейкоцитами, лимфоидными элементами, плазматическими клетками.

Основной причиной воспаления матки у овец Ч.А. Рзаев (1976) считает внедрение инфекции в организм животного через родовые пути или попадание её в матку гематогенным путем. При проведении бактериологических исследований выделений из матки при воспалении её автор установил наличие смешанной микрофлоры.

С.С. Юдович (1939) при исследовании полового аппарата овцематок, больных острым и хроническим гнойно-катаральным эндометритом, установил, что изменения со стороны слизистой оболочки могут представлять разнообразные картины. Так, в одних случаях наблюдалась лишь инфильтрация межуточной ткани слизистой оболочки лейкоцитами и плазматическими клетками и десквамация эпителия; в других происходило фибринозное перерождение стромы; наконец, долго продолжающееся воспаление вело за собой атрофию слизистой оболочки, характеризующуюся истончением её, атрофией покровного эпителия, исчезновением желез.

При гистологическом исследовании полового аппарата овцематок с хроническим послеродовым эндометритом автор установил наличие маточных желез в недеятельном состоянии в глубине слизистой оболочки, которые увеличивались в размерах по мере приближения к поверхности, выводные протоки расширялись, клетки содержали секрет. В некоторых участках эпителиального слоя были обнаружены кистозно расширенные железистые канальцы, сливающиеся между собой в небольшие полости с совершенно дегенерированным железистым эпителием. Выстилающий полость матки эпителий был разрушен и сохранялся лишь в отдельных участках. Матка одной овцы была поражена разлитым гнойным процессом, стенка её совершенно утратила характерные структурные элементы и представляла собой на продольном разрезе расположенную несколькими слоями плотную соединительную ткань.

Только в наружной оболочке сохранялись еще следы гладких мышечных волокон, все остальные структурные элементы стенки матки исчезли.

Карункулы отсутствовали, поверхностный эпителий был совершенно разрушен.

На внутренней поверхности стенки матки имелись отложения фибринозных масс. Причиной указанных патологических изменений при воспалении матки у овец являлась инфекция, которая была выделена из экссудата: стрептококки, кишечная палочка, стафилококки, сальмонеллы.

По мнению А.И. Лопырина и Н.В. Логинова (1956) задержание последа и гнойные воспаления слизистой оболочки матки у овец являются в большинстве случаев осложнением после абортов инфекционной этиологии, в частности, бруцеллезного и паратифозного характера.

В.В. Михайленко и др. (1999), изучая клинико-морфологические особенности ассоциированного течения хламидиоза и микоплазмоза у овец, регистрировал массовые аборты у животных, которые осложнялись послеродовыми эндометритами.

(2002) указывают на то, что одной из основных причин бесплодия овец в хозяйствах Казахстана являются массовые аборты животных, послеродовые осложнения в виде воспалений матки, эмбриональная смертность, возникающие по причине смешанных инфекций:

кампилобактериоза, хламидиоза и сальмонеллеза овец.

В.А. Карпов (1984) отмечает, что послеродовой эндометрит возникает в виде катарального, вскоре переходит в гнойно-катаральную и гнойную форму.

В.Г. Шиманов (1987) установил, что из 100 овец, переболевших эндометритом, роды произошли только у 10, причем у 5 из них плоды были «мертворожденными». Все овцы, больные эндометритом и не подвергавшиеся лечению, остались бесплодными.

2.4 Методы лечения овец, больных эндометритом По Ч.А. Рзаеву (1976), В.А. Карпову (1984), послеродовой эндометрит протекает в виде катарального, вскоре переходит в гнойно-катаральную и гнойную форму. Ч.А. Рзаев (1976) отмечает, что при несвоевременном лечении часть овец погибает, а некоторые остаются бесплодными вследствие перехода эндометрита в хроническую форму.

В.Г. Шиманов (1957) установил, что из 100 овец, переболевших эндометритом, роды произошли только у 10, причем у 5 из них плоды были мертворожденными. Все овцы, больные эндометритом и не подвергавшиеся лечению, остались бесплодными.

Первоочередным мероприятием при лечении овец, больных эндометритом, большинство авторов (Ч.А. Рзаев, 1976; Н.Я. Алиев, 1976; Ш.М. Гузиев, 1976;

В.А. Карпов, 1984) считают изменение условий содержания животных и рекомендуют отделить их от общего стада, обеспечить полноценным кормлением, надлежащим уходом и содержанием. Для лечения эндометритов овец Ч.А. Рзаев (1976), В.А. Карпов (1984) рекомендуют средства местной, общей и комплексной терапии, при этом осуществляются следующие принципы лечения: 1) стимуляция защитных сил организма; 2) повышение сократительной способности матки; 3) подавление жизнедеятельности микробов, находящихся в матке; 4) улучшение кровоснабжения половых органов.

Для механического удаления экссудата и подавления жизнедеятельности микробов в полости матки применяются промывание ее дезинфицирующими растворами (Ч.А. Рзаев, 1957; И.Я. Чистяков, П.Е. Ким, 1974; В.А. Карпов, 1984), но как отмечает Кудряшов М.В. (1948), такая терапия в большинстве случаев малоэффективна, и патологические процессы из острых переходят в хронические. Как указывает Ф.Т. Непасенко (1957), промывание дезрастворами не дает лечебного эффекта и усиливает атонию матки, понижая резистентность и барьерную функцию ее эпителия. Он рекомендует вводить в полость матки овцам 200-300 мл кислого молока и одновременно инъецировать питуитрин или синэстрол. При таком лечении клиническое выздоровление наступало через 8дней.

Очень часто в практических условиях лечение заболеваний полового аппарата у овец обычно ограничивается глубоким спринцеванием влагалища различными дезинфицирующими и солеными растворами. Такая терапия в большинстве случаев малоэффективна и патологические процессы из острых переходят в хронические (М.Ф.Кудряшов, 1970).

Г.А.Немчинов (1956) лечил животных карбахолином и прозерином и получил высокий терапевтический эффект. Больной овце делали по одной инъекции в день с промежутком в 24 часа, всего 3 инъекции. При неполном выздоровлении курс лечения повторяли через 2-3 дня.

Ф.Т.Панасенко (1956) считает, что лечение послеродовых эндометритов у овец антисептическим средствами, применяемыми в виде спринцевания матки нецелесообразно. Антисептические средства вследствие анатомических особенностей половых органов овец можно ввести в полость матки только в первые часы после родов. Кроме того, они угнетают функцию фагоцитов. Для предупреждения эндометритов у овец он рекомендует вводить в полость матки или влагалища 200-300 мл кислого молока (простокваши).

Для лечения животных, больных эндометритом, В.Г. Шиманов (1957) применял синэстрол в дозе 0,2-0,4 мл. Он делал три инъекции в комбинации со спринцеванием матки дезинфицирующими растворами (перманганат калия, пиоктанина, риванола, метиленовой синьки). По его данным, синэстрол в сочетании с местной терапией обеспечивает выздоровление 83,4 % животных.

Также он указывает на удачное применение пенициллина при гнойных и гнойно-геморрагических эндометритах. Препарат вводили внутримышечно 3-4 раза в сутки в дозе 75-100 тыс. ЕД в течение 3-8 дней.

В.К. Ивахненко (1965) на шести овцах, больных эндометритом, применял карбахолин и прозерин с дополнительным внутримышечным введением 2 раза в сутки 250 тыс. ЕД пенициллина. Выздоровели 4 овцы с катаральным эндометритом.

В.Н. Егунов (1965) при лечении эндометритов у овец применял глюкозу, хлористый калий, глюконат кальция, питуитрин «Р». Наряду с применением средств, усиливающих сокращение матки, массажировал матку через брюшную полость. Для лечения овцы, больной гнойным эндометритом, в среднем затрачивали 12 дней, а с массажем — 9.

З.А. Шахмарданов (1967) считает, что эффективный результат при различных формах эндометритов у овец дает подкожное введение 1%-го масляного раствора синэстрола (по 0,4 мл 3 дня), курс пенициллинотерапии и двукратная новокаиновая блокада по В.В. Мосину с интервалом в 5 дней.

В.Е. Старков (1974) отмечает, что хорошие результаты дает применение биохинола. В результате внутримышечного введения его в течение трех дней в дозе 0,3 мл в день на 10 кг веса животного, больные катаральными формами эндометрита выздоравливали через 9-12 дней, а при гнойно-катаральном эндометрите – через 10-15 дней.

И.Я. Чистяков (1973) применял для лечения эндометритов у овец сульфаниламиды. Наилучший эффект получали при даче белого стрептоцида, норсульфазола 2 раза в день в течение трех недель. Сульфаниламидные препараты задавали внутрь, растворяя их в воде, или в виде суспензии. Дозы норсульфазола 0,02-0,05 на 1 кг веса животного.

А.Т. Таракулов (1976) одну группу больных эндометритом овец лечил путем спринцевания матки раствором марганцовокислого калия, подкожно применял синэстрол и внутримышечно пенициллин. Животным второй группы через каждые 48 часов интрааортально вводили 1% раствор новокаина и в третьей группе вводили интрааортально 1% раствор новокаина и внутримышечно бициллин-3. Выздоровление наступало у овец первой группы на 10-12 день, второй группы — на 12-13 день и третьей группы на 10-12 день.

Ч.А. Рзаев (1976) рекомендует при лечении эндометритов у овец применять пенициллин, нафталанскую нефть. С успехом применяли внутриматочно нафталанскую нефть в подогретом до 400 С в дозе 60-100 мл.

В.Р. Тарасов (1980) рекомендует при эндометритах у овец, наряду с маточными средствами, применять для подавления микрофлоры трициллин (3-5г вводят в матку). Можно назначать норсульфазол натрия в рыбьем жире или вазелиновом масле (3г норсульфазола натрия смешивают со 100 мл рыбьего жира или вазелинового масла). Хорошо действуют и таблетки экзутера или палочки фуразолидона.

В.А. Карпов (1984) рекомендует в острой стадии эндометрита применять надплевральную новокаиновую блокаду по В.В. Мосину (однократно).

Хорошие результаты дает также околопочечная новокаиновая блокада по В.Г.Мартынову (одно- или двукратно с интервалом 4-5 дней) или внутриаортальное введение 1% раствора новокаина в дозе 15 мл (две-четыре инъекции с интервалом в 48 часов). Для лечения овец, больных эндометритом, надплевральную новокаиновую блокаду по В.В. Мосину применяли В.А.Берестов (1959), А.И. Чернышев (1964), П.А. Солодков (1964),А.М.Миняев (1968). Клинические наблюдения показали, что надплевральная новокаиновая блокада весьма эффективна при послеродовых острых и гнойно-катаральных эндометритах. При этом методе лечения овцы выздоравливают на 5-6 день (В.В. Мосин, 1975).

С.Б. Иванищенко ОАО ТД «Агрофарм» (2006) предлагает применять палочки внутриматочные «Фурокс 1» для лечения и профилактики воспалительных процессов матки у коров, овец и коз после оказания родовспоможения, оперативного отделения последа, при послеродовых эндометритах.

Препарат вводят в полость матки:

-с лечебной целью овцам и козам по 1-2 палочки через каждые 24 часа до клинического выздоровления (но не более 5 раз);

-с профилактической целью (после оказания родовспоможения или оперативного отделения последа) овцам и козам по 0,5-1 палочке однократно.

Перед введением препарата проводят санитарную обработку наружных половых органов и корня хвоста. При необходимости освобождают полость матки от воспалительного экссудата. Палочки вводят в шейку матки рукой, одетой в полиэтиленовую перчатку разового использования, или с помощью корнцанга и проталкивают в полость матки.

М. Дорош (2007) рекомендует применять при эндометритах для повышения тонуса матки и удаления экссудата питуитрин, окситоцин, 1% р-р синэстрола внутримышечно. Также эффективно использовать антибиотики, проводить массаж матки через брюшную стенку. В полость матки вводить комбинации антибиотиков, сульфаниламидных препаратов, нитрофуранов в форме суспензии и растворов, приготовленных на масляной и водной основе.

А.М. Голубцов (2007) рекомендует применять в воспроизводстве тканевой препарат из плаценты коров.

2.5 Применение лекарственных препаратов для стимуляции адаптационных возможностей организма животных Известно, что пул адаптационных возможностей каждого вида предопределен генетически. Он обеспечивает сбалансированное соблюдение основных законов самосохранения и воспроизводства себе подобных.

Направленная селекция высокой продуктивности существенно деформировала их, заметно снизив потенциал жизнеспособности. Это привело к тому, что у высокопродуктивного животного возможности адаптации к изменяющимся условиям и неблагоприятным воздействиям внешней среды, а также соблюдение указанных законов оказались подмененными преимущественно биосинтезом молока, мяса, яиц, шерсти.

Стало совершенно ясно, что успешное ведение высокопродуктивного животноводства возможно только при соблюдении человеком по отношению к продуктивным животным ряда условий. Они практически отрывают их от природной среды обитания и приближают к биологической машине, задачей которой является производство целевой продукции. Такими условиями являются: 1) обеспечение полноценным пластически и энергетически насыщенным питанием; 2) обеспечение комфортными условиями существования; 3) защита от болезней; 4) обеспечение возможностей для реализации функции самовоспроизводства; 5) обеспечение дозированной информацией; 6) содержание животных заданный промежуток времени в неестественной экологической среде; 7) искусственная регуляция численности (В.С. Бузлама, 2003).

Однако оказалось, что даже при соблюдении этих основных условий возникают нежелательные последствия, чаще всего в виде стрессовых дезадаптаций. Как известно, у маточного поголовья их исходом являются патологии органов размножения и нарушение функции воспроизводства. У молодняка — болезни систем органов пищеварения и дыхания. Трудно найти животных без признаков гепатодистрофии, язв желудка у свиней, нарушений иммунологической резистентности. В итоге – потери продуктивного здоровья, качества продукции, сроков использования маточного поголовья. И это несмотря на ежегодно нарастающий вал использования фармакологических и биопрепаратов для профилактики и лечения болезней животных (В.С.Бузлама, 2004; С.В. Шабунин, 2009).

Здесь уместно акцентировать внимание на следующем. В современной гуманной и ветеринарной медицине выделяют два типа фармакологических препаратов: 1 – лекарства от болезней и 2 – лекарства для здоровья. Лекарства от болезней насчитывают тысячи, для здоровья – в пределах сотен. Хотя, если быть справедливым, стоит подчеркнуть, что лекарства для здоровья (женьшень, золотой корень и др.) родились, по крайней мере, не позднее лекарств от болезней. Однако до последних десятилетий низко цивилизованное общество вынужденно было, в основном, заниматься лечением и отдавать предпочтение специфическим, например, химиотерапевтическим, противопаразитарным и другим средствам. При этом оказалось, что разнообразие и масштабы нозологически дифференцируемых патологий отнюдь не уменьшились, а порой и возросли. Сама собой родилась, а точнее возродилась стратегическая проблема о дальнейших путях развития ветеринарной фармакологии будущего.

На сцене все чаще стали появляться лекарства не от болезней, а для здоровья животных ( А.М. Беркович, 2003, В.И.Беляев, 2004).

Лекарства для здоровья имеют синонимы: адаптогены, стресс-корректоры.

В современном понимании к ним относят лекарственные средства, которые через узловые молекулярно-биохимические механизмы обеспечивают сохранение продуктивного здоровья организма при изменяющихся условиях и неблагоприятных воздействиях среды его обитания. Лекарства для здоровья (адаптогены, стресс-корректоры) проявляют эффект повышения общей резистентности организма или организации в нем состояния неспецифически повышенной сопротивляемости только при раскрытии потенциальной избыточности биологической системы в условиях функциональной нагрузки на нее. Адаптогены повышают резистентность организма к неблагоприятным воздействиям независимо от характера изменяющихся условий и неблагоприятных воздействий внешней среды (факторы физической, химической, биологической, информационной природы). Наиболее характерной особенностью лекарств для здоровья является то, что они повышают резистентность организма на фоне обязательного сохранения здоровья и нормальной жизнедеятельности без последующего истощения жизненных сил. Они должны быть практически нетоксичны и, что особенно важно, не проявлять эффекта адаптации к ксенобиотику в фазе интоксикации.

И еще один важный момент: лекарства для здоровья, в противоположность лекарствам от болезней, могут применяться неопределенно долгий срок, независимо от состояния здоровья животного и без отрицательных последствий для него (Дардымов, 1976).

Наиболее оптимально введение адаптогенных препаратов в технологию получения, выращивания и использования животных. Сегодня не подлежит сомнению, что ведение современного животноводства невозможно без стрессовых ситуаций. Их много. Можно лишь выделить низкую физиологичность: с одной стороны – самих высокопродуктивных животных, а с другой – их среды обитания. Затем это процесс родов, смена кормления, перегруппировки, перевозки, высокие антигенные нагрузки, информационный дискомфорт и другие. Единственным способом уменьшения отрицательных последствий влияния технологически обусловленных стрессогенных факторов является поддержание продуктивного здоровья адаптогенами (Бузлама В.С., 2004, Мещеряков Н.П., 2004).

2.6 Использование адаптогенных лекарственных средств на основе гуминовых веществ Издавна известно, что природные фенолы занимают важное место в обеспечении здоровья млекопитающих животных и птиц. Чтобы подчеркнуть это, достаточно указать витамин Е. С растительной пищей он попадает в животный организм. Являясь одним из наиболее активных природных биоантиоксидантов, а-токоферол в комплексной системе антиоксидантной защиты организма принимает участие в гашении, нейтрализации чрезмерной пероксидации липидов мембран клеток. Это способствует физиологичности течения стресс-реакции и предотвращает переход ее на стадии тревоги в патологический процесс (Барабой В.А., 1974; Евстигнеев Р.П. и др., 1998).

В практике ветеринарной медицины природные гуминовые вещества (в основном торфяного происхождения) их различные модификаты (главным образом натрия, калия, аммония) и композиционные препараты используются в следующих основных направлениях: 1) в качестве эффективных энтеросорбентов для выведения из организма токсинов микробного, грибного происхождения, химических ядов, солей тяжелых металлов, радиотоксинов;

2) для стимуляции продуктивности животных, выступая в качестве средств, способствующих повышению эффективности пищеварения; 3) как иммуномодуляторы; 4) в качестве лечебных препаратов, обладающих противоопухолевым, антимикробным, ранозаживляющим и другим действием.

Наконец, показано, что гуминовые вещества способны повышать сопротивляемость организма к неблагоприятным воздействиям и обеспечивать, облегчать приспособление к изменяющимся условиям внешней среды. Иными словами, проявлять адаптогенное стресс-корректорное действие, то есть быть лекарствами для здоровья. (Бузлама В.С., 2000).

В республике Беларусь с целью увеличения продуктивности и сохранности кур-несушек успешно используют оксидат торфа. (Бузлама В.С., 2000).

В Германии фирмой Rudgers-Werke запатентовано и налажено производство препарата гумин HS-1500. Это щелочная соль гуминовой кислоты высокой чистоты. Препарат вводят в дозах от 0,1 до 2,0г на 1 кг корма;

высокоэффективен для улучшения продуктивности цыплят-бройлеров.

В последние годы в России приобрел популярность препарат Гувитан. Это, по сути, щелочной экстракт торфяной смеси, или гумат натрия. Кроме гуминовых веществ он содержит в себе другие биологически активные вещества, в частности, белки, аминокислоты, витамины, макро- и микроэлементы. Гувитан предназначен для повышения резистентности и продуктивности животных. Его спектр действия достаточно широк. Гувитан способствует профилактике желудочно-кишечных заболеваний молодняка и кормовых отравлений, проявляет стресс-корректорное действие, обеспечивает повышение яйценоскости, ускоряет откорм бройлеров. (Бузлама В.С. 2000).

Известен препарат гумусовой природы – торфобиолин. Он проявил себя в качестве средства предупреждения язвообразования на слизистой оболочке желудка при стрессе. Понятны перспективы использования и торфобиолина, и подобных гуминовых веществ для профилактики стрессорных язвобразований в желудке, расклеве, погрызании и самопогрызании у свиней, кур, пушных зверей (Бузлама В.С. 2000).

Лисун Н.К. (2007) успешно применяла кормовую добавку гумивал для повышения продуктивности и резистентности цыплят-бройлеров в промышленном птицеводстве.

Однако, следует подчеркнуть, что все описанные и ряд других препаратов имеют торфяное происхождения. Они, как правило, низко концентрированы.

При их промышленном применении нарушается природный баланс (Бузлама В.С. 2004).

2.7 Адаптогенное стресс-корректорное действие гуминового препарата Лигфола Препарат Лигфол (олипифат) изначально предложен и в настоящее время проходит клинические испытания в гуманной и ветеринарной медицине в качестве противоопухолевого средства. Однако оказалось, что его противоопухолевая активность не обусловлена цитотоксическим действием.

Олипифат индуцирует в организме некий механизм, ответственный за естественную гибель опухолевых клеток. Дальнейшие исследования выявили его противовирусную, но не вирулицидную активность. Более того, оказалось, что этот, можно сказать, необычный препарат стимулировал деление клеток и защищал их от повреждения (Бузлама В.С. 2003, Беркович А.М. 2003).

Так родилась проблема изучения адаптогенного стресс-корректорного действия нового препарата. Она истекала из признанного постулата о том, что именно стрессовые дезадаптации (Ф.З.Меерсон) являются неспецифическими предшественниками всех нозологически дифференцируемых патологий, не исключая опухоли. Решение главных вопросов проблемы виделось в оценке адаптогенного стресс-корректорного действия Лигфола в эксперименте (Бузлама В.С. 2003).

Методологической основой изучения адаптогенного стресс-корректорного действия Лигфола явились следующие положения: 1) проявление адаптогенного действия изучаемого препарата происходит только при раскрытии потенциальной избыточности биологической системы; 2) потенциальная избыточность организма проявляется при функциональной нагрузке на него; 3) валеоположительный эффект адаптогенов проявляется нормальной или повышенной активной жизнедеятельностью без последующего истощения жизненных сил (Бузлама В.С. 2004).

Многолетние испытания адаптогена стресс-корректора Лигфола показали его эффективность на разных видах животных.

В работе Берковича А.М., Бузламы В.С., Бузламы С.В. Лобашовой О.В.

(2003) представлены данные и обсуждаются результаты исследований по применению адаптогена и стресс-корректора — препарата Лигфол (гуминовые вещества, полученные при гидролизе природного (древесного) лигнина, натрия пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и апирогенная вода) на различных видах сельскохозяйственных животных, а также у собак. Показана его эффективность при целом ряде заболеваний (Лободин К.А., 2006, 2007).

В племенном центре хорьков проводили испытание Лигфола для повышения резистентности самок норок перед гоном. Получили следующие результаты. Лигфол высоко эффективен для повышения резистентной, репродуктивной функции и улучшения качества потомства. Препарат в два раза уменьшает падеж самок. Самки, которым ввели Лигфол, полностью и полноценно осеменились и ощенились. Тогда как в контроле, а это соответствовало всему стаду на предприятии, уровень ощенения был на 16,4% ниже.

Улучшение состояния здоровья и осеменяемости самок сказалось положительно на качестве потомства. В опытной группе получено на 17,5% больше щенков. В то же время мертворожденных оказалось на 14,5% меньше.

В конечном итоге, выход щенят на момент отъема оказался в опытной группе на 13,0% больше, чем в контрольной (www.f33.ru/stats/ligfol.htm).

Применение Лигфола поросятам в период отъема на свинокомплексе «Владимирский» Владимировской области способствовало снижению отхода поросят на 2,3% и повышению их продуктивности на 10,5%. Экономическая эффективность составила 9,6 руб. на рубль затрат (К.С. Сошитов, 2006).

Положительные результаты были получены в результате изучения влияния препарата Лигфол на организм коров и эффективность их оплодотворения в условиях хозяйств Ленинградской области (Андреева Г.М., Племяшов К.В., 2006). Исследователи показали, что препарат повышает резистентность новорожденных телят, укрепляет иммунную систему, снижает процент заболеваемости молодняка.

Изучением влияния Лигфола при разных сроках его введения до отъема на гуморальные, неспецифические факторы поросят-отъемышей в условиях КСХ ЗАО «Краснодонское» Иловлинского района Волгоградской области занимались А.А. Ряднов, Е.В. Петруха, В.В. Саломатин, (2006). Было установлено, что введение Лигфола поросятам-отъемышам за 2 дня и особенно за 3 дня до отъема положительно сказалось на сохранности, на показателях неспецифической резистентности и показателях среднесуточного прироста живой массы.

Испытанием препарата Лигфол в практике лечения лошадей занималась М.В. Андреева (2006). Успешно применяла его в качестве антиоксиданта, стресс-корректора, иммуностимулятора при проведении комплексной терапии различных заболеваний лошадей (при бронхо-легочных заболеваниях, при оперативных вмешательствах и др.).

Клейменов Д.И. (2005) также получил хорошие результаты от применения инъекционного препарата Лигфол и кормовой добавки Гумивал в ветеринарной практике лечения крупного рогатого скота для профилактики послеродовых заболеваний у коров и повышения их продуктивности.

2.8 Заключение Проблема борьбы с бесплодием овец и повышения их многоплодия весьма актуальна и требует дальнейшего разрешения. Для этого необходимо, прежде всего, разобраться в её причинах.

Анализ специальной литературы, посвященной изучению этиологических факторов симптоматического бесплодия овец, в частности, специфических и неспецифических, позволил установить недостаточность данных по этому вопросу. Проблема эта остается актуальной, так как без установления основных причин нарушения воспроизводительной функции овцематок невозможно разрабатывать и применять научно-обоснованные схемы лечебнопрофилактических мероприятий, направленные на борьбу с бесплодием, наносящим значительный ущерб важнейшей отрасли животноводства – овцеводству.

Ликвидация бесплодия овец до настоящего времени является важной задачей зооветеринарной науки и практики овцеводства; улучшение воспроизводства и ликвидация бесплодия животных невозможны без устранения их причин.

В литературе практически нет сведений о роли возбудителей инфекционных заболеваний в нарушении воспроизводительной функции овцематок, о значении комплексной системы диагностики на основании проведения акушерско-гинекологической диспансеризации животных.

В сельскохозяйственных предприятиях РФ не осуществляется систематический контроль за состоянием воспроизводства овец, не разработаны схемы, не проводятся общепрофилактические и специальные ветеринарные мероприятия, направленные на борьбу с симптоматическим бесплодием овец инфекционной и неинфекционной этиологии.

Анализ специальной литературы свидетельствует о незначительном арсенале средств и методов профилактики патологии беременности, родов и послеродового периода у овцематок (абортов, задержания последа, эндометритов, субинволюции матки).

Имеющиеся в специальной литературе данные в отношении бесплодия овец нельзя считать достаточными. Особенно мало данных об акушерскогинекологических заболеваниях овец и их лечении, профилактике. И совсем нет сведений о применении гуминовых препаратов (Лигфол, Гумивал) для профилактики симптоматического бесплодия овцематок.

Исходя из вышеизложенного мы поставили цель – более детально изучить некоторые вопросы этиологии и профилактики бесплодия овец, возникающего в результате развития патологических процессов в половых органах.

2. Собственные исследования

1.2 Материал и методика работы Исследования проводятся с 2005 года на кафедре клинической диагностики и болезней молодняка МГАВМиБ, в ветеринарной лаборатории Одинцовского, Воскресенского районов Московской области, ТНВ ООО «Группа август и К» Шаховского района, ООО Орехово-Зуевского района, Ставропольского НИИ животноводства и кормопроизводства, ЦНМВЛ, совместно с ООО Лигфарм.

В ходе проведения научно-исследовательской работы проводится анализ отчетности ветотдела МСХ и Московской области по заболеваемости овец, анализ данных журналов бактериологических, серологических, вирусологических, токсикологических отделов районных ветлабораторий МО.

В СХП Московской области и ЮФО устанавливались основные причины нарушения воспроизводительной функции овец, приводящего к бесплодию маточного поголовья.

Были разработаны и внедрены схемы проведения общепрофилактических и специальных ветеринарных мероприятий с использованием вакцинации и проведением дезинфекции с применением средства Дезконтен (действующее вещество – тетраметилендиэтилентетрамин).

Проводился анализ данных годовых отчетов, журналов бактериологического, серологического, гистологического, вирусологического, токсикологического отделов межобластной ветлаборатории на предмет проведения комплексной диагностики инфекционных болезней овец с синдромом поражения репродуктивных органов в хозяйствах различных регионов. Анализировались данные о количестве исследуемого материала и положительных результатах по ряду заболеваний овец, регистрировавшихся в отдельных хозяйствах края в течение нескольких лет. В бактериологическом, серологическом отделах районных ветеринарных лабораторий проводили исследование патологического материала, абортплодов, сыворотки крови животных, типизацию культур.

В период ягнения (стойловое содержание) животных проводилось изучение норм санитарно-гигиенического состояния овцеводческих помещений. Исследовали пробы питьевой воды, находящейся в поилках у животных (выборочно по 6 проб в одном помещении ежемесячно в течение стойлового периода). Определяли органолептические, физические свойства, химический состав, проводили бактериологический анализ. Определяли санитарно-гигиеническое состояние кормов, проводили их химикотоксикологический анализ, определяли питательность. Исследования проводились в химико-токсикологических отделах районных ветеринарных лабораторий. Отправляли пробы грубых, сочных, концентрированных кормов.

Определяли содержание каротина, сырого протеина, фосфора, кальция, меди, цинка, масляной кислоты.

Для изучения результатов воздействия факторов внешней среды на организм овцематок проводили гематологические исследования, определение биохимических показателей крови, факторов резистентности организма животных.

Были созданы опытная и контрольная группы овцематок по 20 голов.

Животные опытной группы – содержащиеся в естественных условиях при нарушении санитарно-гигиенических норм, контрольной – в условиях их оптимизации.

Кровь брали у овцематок после родов (на 2-3 день), маточную слизь во время родов и в послеродовой период.

При определении гематологических показателей изучали: содержание гемоглобина и количество эритроцитов фотометрическим методом по оптической плотности с помощью ФЭК; лейкоцитов в камере Горяева;

лейкоцитарную формулу по общепринятой методике.

Из биохимических тестов определяли: общий белок сыворотки крови рефрактометрическим методом; содержание каротина в сыворотке крови – с помощью фотоэлектроколориметра; общий кальций – комплексометрическим методом по Д.Я.Луцкому (1975); неорганический фосфор по общепринятой методике с помощью молибдено-кислого аммония. Резервную щелочность сыворотки крови – по И.П.Кондрахину (1985). Определение фагоцитарной функции лейкоцитов проводили путем постановки опсоно-фагоцитарной реакции. К свежевзятой крови – 0,5 мл добавляли 0,25 мл суточной микробной взвеси (Streptococcus – штамм 209-Г) и 2% р-р лимоннокислого натрия (соотношение 1:1:1), пробирки выдерживали в термостате при t = 37-380 в течение 30 мин. Мазки окрашивали методом Романовского-Гимза. При микроскопии мазка подсчитывают число фагоцитировавших нейтрофилов с оценкой фагоцитарной активности (ФА) – в %, фагоцитарного индекса и фагоцитарного числа. Определение бактерицидной активности сыворотки крови проводили методом, основанном на изменении оптической плотности МПБ при росте в нем кишечной палочки с добавлением и без добавления испытуемой сыворотки (прибор – ФЭК). Определение лизоцимной активности сыворотки крови проводили методом, основанным на изменении оптической плотности среды в результате способности лизоцима крови лизировать тесткультуру. Micrococcus lijodecticus (штамм 19) в 0,5% р-ре поваренной соли.

Для изучения воздействия факторов внешней среды на организм овцематок в опытных и контрольных группах устанавливали фагоцитарную активность нейтрофилов и количество глюкозоаминогликанов в маточной слизи.

Метод определения фагоцитарной активности нейтрофилов маточной слизи основан на визуальном учете числа бактерий, захваченных нейтрофилами в процессе естественного фагоцитоза в полости матки животного. Мазки маточной слизи высушивали на воздухе, фиксировали, окрашивали по Романовскому-Гимза и микроскопировали.

При этом оценивали захватывающую способность нейтрофилов по двум показателям:

фагоцитарному индексу (количество бактерий, захваченных одним нейтрофилом) и проценту фагоцитоза (отношение количества нейтрофилов, участвующих в фагоцитозе, к общему числу подсчитанных).

Метод определения мукополисахаридов в маточной слизи заключается в том, что при наличии мукополисахаридов в исследуемой пробе добавление к ней 1 мл 1%-го раствора уксусной кислоты вызывает образование сгустка, который не разрушается при встряхивании. Учет реакции проводили через 6, 12, 24, 48, 72 часа.

Проводили цитохимические исследования мазков маточной слизи (влагалищных мазков) овцематок с нормально протекающим половым циклом и животных, не приходящих в охоту. Определяли показатели пероксидазной активности в эпителиальных клетках по следующей методике.

Пероксидазу выявляли с диаминобензидином (ДАБ). Этот метод, предложенный Novicoff, Goldfisher (1969) в модификации Lojda (1982), основан на способности фермента окислять ароматические амины до окрашенных соединений (Луппа Х., 1980). Он позволяет выявлять пероксидазу в пероксисомах. Конечный продукт –ДАБ-коричневый –является аморфным, нерастворимым в липидах осмиофильным соединением. Инкубацию проводили в среде, содержащей 3,3 – ДАБ и 0,2% р-р перекисли водорода при рН – 7,8.

Для контроля специфичности реакции инкубацию проводили в среде без ДАБ;

в рабочей среде, но после инактивации фермента тепловым шоком. Об активности пероксидазы судили по количеству включений в 100 эпителиальных клетках каждого мазка.

В опытном хозяйстве проводилась акушерско-гинекологическая диспансеризация овцематок. За указанный период были обследованы 300 овцематок в период их осеменения и после родов планово, в период суягности и родов при необходимости. Животных подвергали клиническому, акушерскогинекологическому обследованию, проводили лабораторные исследования, включающие патоморфологическую, бактериологическую, серологическую диагностику, определяли показатели естественной резистентности организма овец, проводили цитохимические исследования влагалищных мазков. При этом учитывалась и анализировалась заболеваемость овцематок инфекционными болезнями с синдромом поражения репродуктивных органов, их плодовитость и процент выхода молодняка.

Для сравнительной оценки методов лечения овцематок, больных послеродовыми эндометритами при смешанных инфекциях, нами были сформированы 3 группы животных по 30 голов в каждой.

Для лечения овцематок с различными формами послеродовых эндометритов нами были разработаны и испытаны следующие схемы.

1. Байтрил-5% р-р для инъекций. Вводить подкожно, 1 раз в сутки в течение 3дней. Разовая доза-1мл / 20 кг живой массы.

2. Катозал-10% р-р для инъекций. Вводить внутримышечно, однократно в дозе 2,5-8 мл на животное. В случае необходимости повторить на следующий день.

3. Йодинол-1% р-р. Вводить внутриматочно, один раз в день в течение 3-5 суток. Разовая доза 50 мл.

4. Синэстрол-1% р-р для инъекций. Вводить подкожно, 1 раз в день в течение 3

–5 суток. Разовая доза 0,5 мл.

1. Тетразол-20% р-р для инъекций. Вводить внутримышечно, однократно, 1 раз в 3 дня. Разовая доза 1 мл / 10 кг живой массы.

2. Пресакральная новокаиновая блокада – 1% р-р новокаина, 30мл. Вводить 1 раз в 3 дня.

3. Адаптоген стресс-корректор Лигфол. Вводить внутримышечно, 1 раз в 3 дня. Разовая доза 1 мл на животное.

4. АСД (фракция 2 или 3). Вводить внутриматочно, 1 раз в день в течение 5-7 суток. Разовая доза 20 мл АСД + 30 мл растительного масла (смешать перед применением).

Схема 3. Эта схема лечения овцематок, больных гнойно-катаральным эндометритом применялась в хозяйстве (контрольная группа).

Животным вводили внутримышечно бициллин-3 (600 тыс. ЕД) 1 раз в 3 дня и ежедневно внутриматочно фуразолидоновые палочки.

У всех животных каждой группы эксперимента до лечения, через 3, 6 и 9 дней после проведенного лечения исследовали кровь. Определяли количество эритроцитов, лейкоцитов, общий белок, количество гемоглобина, выводили лейкоцитарную формулу.

Определение экономической эффективности лечебных мероприятий проводили по методике, утвержденной Главным управлением ветеринарии МСХ СССР 4 мая 1982 года.

Экономический ущерб от вынужденного убоя животных (У1) рассчитывали как разницу между стоимостью животных в закупочных ценах и денежной выручкой от реализации продуктов убоя.

Расчет проводили по формуле:

У1 = М Х Ж Х Ц – Сф, где М – количество вынуждено убитых животных, голов;

Ж – средняя живая масса животных каждой группы, кг;

Ц – закупочная цена единицы продукции, руб.;

Сф – денежная выручка от реализации продуктов убоя (овчин), руб.;

Ущерб, предотвращенный в результате лечения больных животных (Пу2) определяли как разницу между возможным и фактическим ущербом, причиняемым болезнью в результате переболевания овцематок Пу2 = Мл х Кл х Ж х Ц –У, где М л – количество животных, подвергнутых лечению;

К л – коэффициент летальности; Кл = К павших: К заболевших;

Затраты на проведение ветеринарных мероприятий складывались из совокупности всех расходов, связанных с их осуществлением.

Экономическую эффективность ветеринарных мероприятий определяли по формуле:

Эв = Пу – Зв, где Эв – ветеринарные затраты;

Пу – предотвращенный экономический ущерб.

Экономическая эффективность на рубль затрат:

Эр = Эв : Зв, где Эв – экономическая эффективность ветеринарных мероприятий;

При расчете экономического ущерба от вынужденного убоя животных использовали данные по реализации сельскохозяйственной продукции сельскохозяйственных предприятий.

Изучали проявление воздействия возбудителей инфекции и факторов внешней среды на воспроизводительную функцию овцематок. В период осеменения животных устанавливали некоторые проявления нарушения воспроизводительной функции у переболевших маток (опытная группа 40 голов). Контролем служили здоровые овцематки (40 голов). Учитывалась интенсивность прихода животных в охоту в течение двух половых циклов, количество повторно осемененных овец и не проявивших стадии возбуждения полового цикла. В дальнейшем определяли процент бесплодия маточного поголовья, количество патологических родов и послеродовых осложнений.

Проводилось испытание действия адаптогена стресс-корректора Лигфол для профилактики акушерско-гинекологической патологии родов и послеродового периода овцематок, а также для улучшения продуктивных качеств ягнят. Из овцематок ставропольской породы возраста 1,5 лет были сформированы опытная и контрольная группы по 15 голов в каждой.

Проводили клинические, акушерско-гинекологические обследования животных.

За 10 дней до ягнения овцам инъецировали Лигфол в опытной и физраствор в контрольной группе. Через 5 дней после обработки проводили контроль естественной резистентности организма овцематок, определяли неспецифические иммунные факторы местной защиты, биохимический, физико-химический, морфологический анализ крови. Определяли содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, общего белка, АлАТ, АсАТ, глюкозы, резервной щелочности, железа. Проводили контроль показателей естественной резистентности организма. Определяли бактерицидную, лизоцимную активность сыворотки крови, фагоцитарную функцию. Изучали неспецифические иммунные факторы местной защиты – фагоцитарный индекс и % фагоцитоза в мазках маточной слизи.

В период осеменения овцематок в опытном хозяйстве проводилась иммунизация животных с использованием вакцины против листериоза овец.

Опыт проводили на 30 животных в ОПХ «Темнолесское», Шпаковского района Ставропольского края. Перед постановкой опыта провели выборочное клинико-гематологическое исследование. Установленные показатели соответствовали физиологической норме для данного вид животных: средняя температура тела 39,1 ± 0,1 0С, пульс в среднем был равен 80,5 ± 0,4 ударов в минуту, дыхание 20,4 ± 0,5. Термометрию и клиническое обследование овец проводили также и после вакцинации.

Для проведения опыта были сформированы 2 опытные и 1 контрольная группы по 10 животных в каждой. Животных иммунизировали перед осеменением. Перед вакцинацией сыворотки крови всех овец исследовали на листериоз в РА (для определения фона антител).

Первая группа – вводили внутримышечно 1,5 мл вакцины сухой живой ассоциированной против листериоза овец из штамма «АУФ» в область внутренней поверхности бедра. Через 10 дней животных ревакцинировали листериозной вакциной в дозе 3,0 мл.

Вторая группа – вакцинировали аналогично и одновременно делали инъекцию Лигфола в дозе 1,0 мл на животное.

Третья группа – вводили физраствор внутримышечно в дозе 1 мл на животное.

С целью изучения динамики накопления антител при различных методах иммунизации в процессе опытов кровь для постановки РА с листериозными антигенами у овец брали также через 14, 30, 90 дней после иммунизации.

Определяли также количество эритроцитов, гемоглобина, общего белка.

О реактогенности вакцины судили по общему состоянию животного, аппетиту, температуре тела, воспалительной реакции в месте введения биопрепаратов.

До и после вакцинации и ревакцинации проводили термометрию животных, клиническое обследование. Кровь для постановки РА с сальмонеллезным и листериозным антигенами брали до иммунизации, через 2 недели, 3 месяца, 6 месяцев после неё.

Результаты экспериментов подвергали вариационно-статистической обработке по методике Г.Ф. Лакина (1990), а также использовали статистический модуль Microsoft Excel и программу Primer of Biostatistics (Version 4.03).

3.2 Этиология бесплодия овцематок, основные нарушения воспроизводительной функции В соответствие с классификацией по А.П. Студенцову (1999) у животных различают следующие основные формы бесплодия:

Врожденное бесплодие у овцематок встречается редко. Выражается оно в неспособности животного к воспроизводству. Происходит это в результате различных нарушений внутриутробного развития плода. Причиной ненормального развития иногда является биологическая неполноценность яйцеклетки, спермиев или зачатия в начальном периоде. Встречается у овец гермафродитизм и фримартинизм. Встречаются овцы с различными другими нарушениями в развитии полового аппарата: узкое влагалище, матка без одного или двух рогов, различные аномалии шейки матки.

Старческое бесплодие. По данным многих авторов с 6-8 летнего возраста в организме овец, особенно в половой системе, начинаются постоянные возрастные старческие изменения. В частности, постепенно атрофируется матка, яичники, уменьшается их вес, объем, ослабевают их функции, нарушается половая цикличность, прекращается течка, половая охота и овуляция.

Алиментарное бесплодие – бесплодие овцематок, возникающее на почве нарушения плодовитости вследствие количественной и качественной недостаточности кормов.

Климатическое бесплодие – нарушение плодовитости животных вследствие угнетения половой функции под воздействием метеорологических факторов. Резкие перемены климата, избыток тепла и света, сильный холод могут нарушить половую функцию овец и привести к бесплодию. На организм овцематки влияет макро- и микроклимат. При климатическом бесплодии угнетается функция яичников, половой цикл не полноценный, он ослабевает, иногда выпадают отдельные фазы его.

Симптоматическое бесплодие — бесплодие, возникающее на почве заболевания половых органов. Сущность его объясняется следующими факторами: 1) гибелью спермиев в женской половой системе вследствие их попадания в неблагоприятную среду; 2) гибелью яйцевой клетки или зиготы;

3) невозможностью проникновения зиготы в полость матки; 4) нарушением полового цикла животного.

Одной из причин симптоматического бесплодия у овец является патология беременности, родов и послеродового периода. Нарушение технологии содержания, кормления, дисбаланс параметров микроклимата животноводческих помещений, перегруппировки, зооветеринарные мероприятия являются серьезными стресс факторами для суягных овец.

Неудовлетворительное ветеринарно-санитарное состояние ферм, нарушение гигиенических норм эксплуатации, кормления и содержания оказывает негативное влияние на животных. Ухудшается физиологическое состояние, снижается общая резистентность организма овцематок, что способствует их заболеванию.

Фото 1. Содержание овцематок с ягнятами в овцеводческом помещении При изучении этиологических факторов симптоматического бесплодия овцематок в «ИП Манохин», Раменского района, Московской области проводили клинические обследования животных, гематологические исследования, определение биохимических показателей крови, факторов резистентности организма животных.

В результате проведения исследования маточного поголовья овец нами были выявлены две формы бесплодия – симптоматическое и алиментарное.

Всего было обследовано 300 овцематок, из которых, как оказалось, 18% были признаны бесплодными (60 животных). Из них с симптоматическим бесплодием выявлено 35 овец и с алиментарным бесплодием 25 овец, что составило, соответственно, 12% и 8% от общего поголовья обследованных овцематок.

Проведенный нами анализ условий содержания и кормления овцематок, показал нарушения санитарно-гигиенических норм, неполноценность рационов кормления, что оказывало отрицательное влияние на показатели естественной резистентности их организма. Также это сказывалось на полноценной половой цикличности самок, их оплодотворяемости и плодовитости.

Фото 2. Послеродовое отделение в овцеводческом помещении

При исследовании проб питьевой воды из поилок в овцеводческих помещениях было установлено несоответствие её качества нормам санитарногигиенической оценки по следующим показателям:

прозрачность – 15-16 см (норма 20 см и выше);

окисляемость – 12-14 мг/л (норма 4-6 мг/л);

нитраты – 16 мг/л (норма 10 мг/л).

Бактериологический анализ показал увеличение общего количества бактерий в 1 мл воды в 3,5 раза выше нормы, была выявлена патогенная микрофлора: Salmonella typhimurium, Salmonella abortus ovis, E. coli, Campylobacter fetus intestinalis, Echerichia coli.

Также в результате химико-токсикологических и микологических исследований 30 проб грубых, 20 проб сочных кормов, 15 проб концентрированного корма установлено: в силосе снижение содержания каротина в 2,5 раза, сырого протеина в 2 раза по сравнению с нормой, в 2 раза повышено содержание масляной кислоты. В пробах сена установлен дефицит каротина – следы (при норме 10-11 мг/кг), фосфора в 3 раза, меди – в 4 раза, цинка в 2 раза по сравнению с нормой.

Анализ 15 проб сенажа показал снижение содержания каротина в 32% проб, кальция – в 51% проб, фосфора в 43% проб, повышение содержания масляной кислоты в 16% проб от исследованных. Микологический анализ комбикорма показал рост грибов: Aspergilius flavus, А.fumigatus, Penicillum, Mucor raremosus, единичные случаи Fusarium.

Неудовлетворительное качество корма, используемого для овец, отрицательно воздействует на их организм, о чем свидетельствуют результаты исследования сыворотки крови маток.

В результате исследования 30 проб сыворотки крови от овцематок, принадлежащих «ИП Манохин», Раменского района Московской области установлено: гипокальцемия — в 60% проб, гипофосфатемия — в 60% проб, гиперкетонемия — в 50% проб, гипопротеинемия — в 20% проб, снижение резервной щелочности — в 60% проб, гипогликемия в 50% проб.

При определении: фагоцитарной активности нейтрофилов, бактерицидной, лизоцимной активности сыворотки крови, фагоцитарной активности нейтрофилов и количества глюкозоаминогликанов в маточной слизи были получены следующие результаты (Таблица 1).

Таблица 1 Показатели неспецифической резистентности организма овцематок Лизоцимная Бактерицидная Фагоцитарная № группы активность (%) активность (%) активность (%) Опытная (20 50,6 ± 0,3 70,5 ± 1,04 40,4 ± 0,29 овцематок) Контрольная 66,4 ± 0,4 78,2 ± 1,2 55,02 ± 0,45 (норма) p0,1 Анализ полученных данных показал значительное снижение показателей неспецифической резистентности у животных, находящихся в условиях нарушения норм содержания и кормления (опытная группа). У этих овцематок были снижены показатели лизоцимной активности сыворотки крови в среднем на 15,8% по сравнению с контрольной группой, бактерицидной активности на 7,7%, фагоцитарной активности на 14,6%.

В результате исследования 20 проб цервикальной слизи овцематок опытной группы в 10 пробах (50%) мукополисахариды были разрушены (отрицательный результат), в 10 пробах (50%) образовался сгусток, который не разрушался при встряхивании (положительные результаты). В контрольной группе (n = 20) мукополисахариды были разрушены в 3 пробах – 15% (отрицательный результат), образование сгустка (наличие мукополисахаридов) отмечалось в 17 пробах – 85% (положительные результаты). Таким образом, у овец опытной группы было зарегистрировано разрушение мукополисахаридов маточной слизи в 3 раза чаще, чем у животных контрольной группы, что также подтверждает снижение неспецифических иммунных факторов местной защиты. Всё это свидетельствует о предрасположенности животных к заболеваемости.

Инфекционные болезни, поражающие органы воспроизводства (сальмонеллез, листериоз, кампилобактериоз, хламидиоз и др.), также являются причиной массовых абортов животных, патологических родов, тяжелых послеродовых осложнений и приводят к бесплодию.

В период осеменения овцематок нами изучались некоторые проявления нарушения воспроизводительной функции у овцематок, переболевших инфекционными заболеваниями с синдромом поражения репродуктивных органов (опытная группа). Контролем служили здоровые животные.

Анализ проведенных исследований нарушения воспроизводительной функции у переболевших инфекционными заболеваниями овцематок показал, что 60% животных опытной группы не проявили стадии возбуждения в течение двух половых циклов и остались яловыми, патологические роды и послеродовые осложнения регистрировались у 63% маток. В контрольной группе объягнились 90,0% овец, патологические роды наблюдались у 8%, послеродовые осложнения – у 5,0% маток (Таблица 4).

Фото 4. Переболевшие овцематки с нижесредней упитанностью

3.3 Контроль состояния воспроизводства овец на основании проведения акушерско-гинекологической диспансеризации В настоящих условиях реформирования сельскохозяйственного производства всё острее встают вопросы интенсивного воспроизводства стада.

Для контроля состояния воспроизводства в овцеводческих хозяйствах необходимо проводить акушерско-гинекологическую диспансеризацию. Это позволяет осуществлять контроль за состоянием воспроизводства овец, своевременно выявлять больных животных и проводить профилактические и лечебные мероприятия.

Акушерско-гинекологическая диспансеризация – это комплекс диагностических, лечебных и профилактических мероприятий, направленных на выявление причин и форм бесплодия самок, восстановление воспроизводительной функции и их высокой продуктивности (Шипилов В.С. и др., 2000).

В овцеводческих предприятиях акушерско-гинекологическая диспансеризация должна проводиться в период их осеменения и после родов планово, в период суягности животных – при необходимости (см. схему). При этом важное значение имеет последовательное соблюдение всех этапов, систематичность, проведение мероприятий в течение года в связи с особенностями технологии выращивания овец и их физиологии).

Основные задачи акушерско-гинекологической диспансеризации овец:

Изучение физиологического состояния животных путем общего 1.

Диагностика состояния репродуктивных органов овцематок в период 2.

Выявление наиболее характерных признаков патологических 3.

изменений в половых органов с применением акушерско-гинекологического исследования. Прогнозирование патологии родового акта.

Постановка точного диагноза заболевания. Определение полного 4.

состава возбудителей инфекций.

Разработка схем лечебных и профилактических мероприятий.

В связи с противоречиями о сроках проведения акушерскогинекологической диспансеризации овец в производственных условиях в «ИП Гаспарян», Щелковского района Московской области нами было проведено обследование 300 овцематок романовской породы в возрасте от 1,5 до 4,5 лет. В период осеменения овец проводили исследование животных непосредственно перед осеменением, а также изучали причины отсутствия стадии возбуждения у маток в течение двух половых циклов.

Животных подвергали клиническому обследованию, определяли показатели естественной резистентности организма – фагоцитарную функцию лейкоцитов, бактерицидную, лизоцимную активность сыворотки крови, фагоцитарную активность нейтрофилов маточной слизи.

Фото5. Проведение клинического обследования овец

В результате проведенных лабораторных исследований у овец были выделены возбудители сальмонеллеза, кампилобактериоза, листериоза, хламидиоза в разных ассоциациях. Клинических проявлений указанных заболеваний выявлено не было. Животные являлись микробоносителями.

Овцематок, не проявляющих половой охоты, подвергали акушерскогинекологическим исследованиям с использованием специальных лабораторных тестов, включающих цитохимический анализ влагалищных мазков, исследование влагалищной слизи и патоморфологические исследования участков полового аппарата животных с целью изучения особенностей протекания патологических процессов.

Фото 7,8,9 Проведение акушерско-гинекологичеких исследований овец

При проведении цитохимического анализа влагалищных мазков определяли показатели пероксидазной активности в эпителиальных клетках мазков влагалищной слизи овцематок. В основе этого цитохимического теста лежит зависимость уровня активности пероксидазы в эпителиальных клетках влагалищных мазков от уровня концентрации эстрадиола в организме овец. Этот фермент обеспечивает проходящий в пероксисомах путь свободного окисления веществ, посредством которого происходит обезвреживание ряда токсически действующих и нежелательных для организма веществ. Пероксисомы содержат системы, генерирующие перекись водорода и каталазу, которая при низких концентрациях обладает пероксидазной активностью. Они осуществляют антимикробную, пищеварительную функцию и участвуют в процессах синтеза.

Пероксидаза, обеспечивая биосинтез ряда биологически важных веществ (стероидных гормонов), взаимопревращение некоторых аминокислот, является движущим звеном метаболизма (В.А. Усольцева, 1973). Проведенный нами анализ показал следующее (Таблица7).

Динамику активности пероксидазы определяли посредством подсчета количества пероксисом, которые выявлялись в виде четких коричнево-черных гранул в цитоплазме эпителиальных клеток влагалищных мазков овцематок с нарушением воспроизводительной функции и нормальным проявлением полового цикла.

В результате исследования влагалищных мазков здоровых овец и животных с отсутствием половой охоты было установлено среднее содержание гранул пероксидазы в цитоплазме клеток: 14,95 ± 0,6 (при нормальном половом цикле) и 0,92 ± 0,1 (при патологии).

У овцематок с нормальным половым циклом гранулы пероксидазы были хорошо окрашены, округлой формы, распределялись по всей цитоплазме эпителиальных клеток влагалищных мазков. У животных с отсутствием половой охоты распределение пероксисом в цитоплазме была крайне неравномерна, общее количество гранул фермента сильно снижено по

В результате исследования 10 проб цервикальной слизи овцематок не проявляющих стадии возбуждения полового цикла в 6 пробах (60%) мукополисахариды были разрушены (отрицательный результат), в 4 пробах (40%) образовался сгусток, который не разрушался при встряхивании (положительные результаты). В пробах цервикальной слизи от овец с нормальным половым циклом (n = 10) мукополисахариды были разрушены в 1 пробе – 10% (отрицательный результат), образование сгустка (наличие мукополисахаридов) отмечалось в 9 пробах – 90% (положительные результаты). Таким образом, у овец с нарушением стадии возбуждения полового цикла зарегистрировано разрушение мукополисахаридов маточной слизи в 6 раза чаще, чем у животных с нормальным половым циклом, что также подтверждает снижение неспецифических иммунных факторов местной защиты.

При проведении патоморфологической диагностики были выявлены следующие изменения.

Проводимый нами гистологический анализ различных участков половых органов бесплодных овец показал морфофункциональные изменения, связанные с гипофункцией. Наблюдалось нарушение структуры эпителиальных клеток маточных желез, десквамация и атрофия железистого эпителия, уплотнение некоторых участков стромы тела матки за счет разрастания соединительной ткани, клеточная инфильтрация эпителия отдельных складок рогов матки. В некоторых участках отмечалось расслоение мышечного слоя. В яичниках наблюдали отсутствие вторичных и зрелых фолликулов в корковом слое, разрастание соединительной ткани в некоторых участках, утолщение стенки сосудов стромы яичника.

В период суягности проводили обследование больных (абортировавших) животных и наблюдение за матками — микробоносителями, выявленными в процессе проведения первого этапа акушерско-гинекологической диспансеризации. Больных животных исследовали путем применения методов клинической, акушерско-гинекологической диагностики, проводили патоморфологические и бактериологические исследования абортированных плодов с целью исключения стационарных инфекций. Больных и микробоносителей метили и изолировали.

Перед родами с целью прогнозирования их течения у овцематок выборочно проводили цитохимические исследования влагалищных мазков.

Проводили также определение фагоцитарной активности нейтрофилов и количества глюкозоаминогликанов в маточной слизи, как факторов местной защиты в половом аппарате овцематок.

В результате проведения комплексных исследований было установлено, что основной причиной абортов овец являются возбудители сальмонеллеза, кампилобактериоза, листериоза, хламидиоза.

В послеродовой период осуществляли клиническое, гинекологическое обследование овец на 7, 14, 20 день с целью контроля послеродовой инволюции матки с исследованием лохий и выявления патологических процессов.

У больных животных изучали особенности течения патологического процесса — исследовали экссудат при эндометритах с определением их клинических форм, выявляли и идентифицировали в лаборатории возбудителей инфекции, используя специальные лабораторные методы исследования:

бактериологический, серологический, иммунофлуоресцентный, ПЦР.

Проводили исследование влагалищной слизи овцематок для диагностики функционального состояния половых органов.

1. Исследовали пробы слизи (экссудата) в физиологические периоды полового цикла и при изучении критериев патологических процессов.

Одновременно оценивали послеродовую инволюцию матки (по стадиям), определяли соответствие цвета и консистенции выделений стадиям инволюции.

Для получения проб маточной слизи мы использовали «акушерскую ложку Панкова» (АЛП).

В первые 7 дней после окота АЛП хорошо входит во влагалище до шейки матки, заполняется лохиями, характерными по консистенции и цвету стадиям инволюции (от темно-красного цвета и жидкой консистенции до прозрачной густой слизи). На 14-15 день после окота в ложечке содержалось небольшое количество мутноватой или прозрачной слизи, у здоровых маток в этот период выделения лохий заканчивается. К 21-му дню после ягнения АЛП лишь частично входила во влагалище, лохии отсутствовали.

2. Определяли формы клинических эндометритов, исследуя экссудат на цвет, запах, консистенцию, рН, учитывали показатели акушерскогинекологического и общего клинического исследования, а также особенности течения болезни.

С целью диагностики критериев патологических процессов также использовали АЛП.

При всех формах клинически выраженного эндометрита слизистая оболочка преддверия влагалища была гиперемирована с синюшным оттенком.

Акушерская ложка легко входила во влагалище овцы, всегда была заполнена экссудатом, характерным для различных форм эндометритов.

При этом при различных формах эндометритов были установлены следующие изменения:

-при остром гнойно-катаральном эндометрите – на 5-6 день после ягнения экссудат был слизисто-гнойный, жидкой консистенции, желто-бурого цвета с неприятным запахом.

-при катарально-гнойном эндометрите – на 10-12 день после ягнения экссудат имел вид мутной слизи с примесью желтовато-серых хлопьев и прожилок гноя.

-при послеродовом фибринозном или гнойно-фибринозном эндометрите экссудат был серо-коричневого цвета, жидким с примесью фибрина в виде плотных крупинок или полужидкий с примесью фибрина и прожилок гноя.

-при послеродовом некротическом эндометрите экссудат был краснобурого цвета со сгустками фибрина и примесью крошкообразных некротических масс, имел зловонный запах. Слизистая оболочка влагалища болезненная, животное угнетено.

-при хроническом эндометрите – через 30 дней после ягнения образец содержал мутный слизисто-гнойный экссудат сливкообразной консистенции с примесью прожилок гноя.

По мере выздоровления животных в пробе из влагалища уменьшалось содержание примесей фибрина, гноя, слизь густела, светлела и становилась прозрачной.

Проведение разработанной нами акушерско-гинекологической диспансеризации, а также в последующем лечебно–профилактических мероприятий позволило в ряде сельскохозяйственных предприятий Московской области снизить процент заболеваемости овец с 40 до 10%, повысить плодовитость овцематок до 110%, а сохранность молодняка – до 96%. Были установлены причины нарушения у них половых циклов. В последующем осуществлялись мероприятия по стимуляции половой функции, повышению неспецифической резистентности организма овцематок (применение адаптогена стресс–корректора Лигфол), проводились общие и специфические профилактические мероприятия с использованием дезинфицирующего средства нового поколения Дезконтен и путем проведения комплексной вакцинации с применением препарата Лигфол.

Рис.1 Схема проведения акушерско-гинекологической диспансеризации овец (Гнездилова Л.А., 2004)

3.4 Применение адаптогена стресс-корректора Лигфол для профилактики патологии послеродового периода у овцематок Одной из причин симптоматического бесплодия у овцематок является патология родов, которая встречается у 4,9 – 34% животных. Нарушение технологии содержания и кормления, дисбаланс параметров микроклимата животноводческих помещений, зооветеринарные мероприятия являются серьезными стресс-факторами для беременных овец. Развитию акушерскогинекологической патологии способствуют изменения, происходящие в организме животных: нарушение нейро-гуморального регулирования, обмена веществ, процесса кроветворения, иммунной защиты, снижение естественной резистентности. Результат всего этого — аборты, патология родов, задержание последа, субинволюция матки, развитие внутриутробной гипоксии молодняка.

С целью решения этих проблем в период беременности и родов овцематок нами проводились испытания адаптогена стресс-корректора Лигфол совместно с сотрудниками Ставропольского НИИЖК. Это композиционный препарат, основным действующим началом которого являются гуминовые кислоты. В состав препарата входят: гуминовые кислоты, натрия пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная апирогенная вода. Это стерильный препарат в форме инъекционного раствора для парентерального применения.

В России изучение применения гуминовых препаратов в качестве кормовой добавки для сельскохозяйственных животных начаты в 60-х годах и продолжаются до настоящего времени. Накоплен большой экспериментальный материал, подтверждающий, что гуминовые вещества обладают широким спектром биологической активности, оказывая воздействие на обменные процессы в организме животных и человека. Они поставляют микроэлементы, обогащая иммунную систему, что дает животным возможность эффективно противостоять болезням. Гуминовые препараты применяются в качестве биологических стимуляторов при выращивании сельскохозяйственных животных. Активизируют рост и развитие, повышают продуктивность, снижают заболеваемость и отход молодняка.

Установлено, что гуминовые вещества влияют на регуляторные системы клетки. Механизм их фармакологического действия связан с интенсификацией синтеза белка и иммунореактивных факторов клетками организма животных и птиц (А.М. Беркович, В.С. Бузлама, 2006).

Гуминовые, фульвокислоты, пиримидины, аминокислоты влияют на аденилатциклазную систему клетки и систему ферментов, ответственных за синтез олигоаденилата – медиатора действия интерферона. В частности их действие опосредуется одновременной активацией АЦ (аденилатциклазы) и ингибированием ФДЭ (фосфодиэстеразы), что приводит к усилению синтеза цАМФ (аденозинмонофосфатазы). Повышение внутриклеточной концентрации цАМФ может приводить к биологическим эффектам в зависимости от типа клетки и её состояния в данный момент. Происходит регуляция ферментов углеводного и жирового обмена, иммунных реакций, факторов естественной резистентности организма (А.М. Беркович, В.С. Бузлама, 2003).

Учитывая данные предпосылки перед нами была поставлена задача оценить возможность использования адаптогена стресс-корректора Лигфол для повышения естественной резистентности организма овец в период ягнения, для профилактики патологий родов и послеродовых осложнений, а также для улучшения продуктивных качеств ягнят.

В ООО СП «Гвардеец», Красногвардейского района, Ставропольского края из овцематок ставропольской породы возраста 1,5 лет были сформированы опытная и контрольная группы по 15 голов в каждой.

Проводили клинические, акушерско-гинекологические обследования животных.

За 10 дней до ягнения овец инъецировали Лигфолом в дозе 1мл на животное в опытной и физраствором (1мл) в контрольной группе. Через 5 дней после обработки проводили контроль естественной резистентности организма овцематок, определяли неспецифические иммунные факторы местной защиты, проводили биохимический, физико-химический, морфологический анализ крови. Определяли содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, общего белка, АлАТ, АсАТ, глюкозы, резервной щелочности, железа. Проводили контроль показателей естественной резистентности организма. Определяли бактерицидную, лизоцимную активность сыворотки крови, фагоцитарную функцию. Изучали неспецифические иммунные факторы местной защиты – фагоцитарный индекс и % фагоцитоза в мазках маточной слизи.

Для изучения воздействия факторов внешней среды на организм овцематок в опытных и контрольных группах устанавливали фагоцитарную активность нейтрофилов и количество глюкозоаминогликанов в маточной слизи.

Метод определения фагоцитарной активности нейтрофилов маточной слизи основан на визуальном учете числа бактерий, захваченных нейтрофилами в процессе естественного фагоцитоза в полости матки животного. Мазки маточной слизи высушивали на воздухе, фиксировали метиловым спиртом, окрашивали по Романовскому-Гимза и микроскопировали.

При этом оценивали захватывающую способность нейтрофилов по двум показателям:

фагоцитарному индексу (количество бактерий, захваченных одним нейтрофилом) и проценту фагоцитоза (отношение количества нейтрофилов, участвующих в фагоцитозе, к общему числу подсчитанных).

Метод определения мукополисахаридов в маточной слизи заключается в том, что при наличии мукополисахаридов в исследуемой пробе добавление к ней 1 мл 1%-го раствора уксусной кислоты вызывает образование сгустка, который не разрушается при встряхивании. Учет реакции проводили через 6, 12, 24, 48, 72 часа.

За 5-6 дней до ягнения – повторные инъекции Лигфола (1мл на животное) и физраствора (1 мл на животное) в обеих группах.

В период ягнения провели клинические, акушерско-гинекологические обследования животных опытной и контрольной группы. Учитывали при рождении живую массу ягнят в опытной и контрольной группе, количество случаев патологических родов, послеродовых осложнений, мертворождения ягнят с определением основных причин отхода (патологоанатомические, гистологические, бактериологические исследования). На 7 сутки после ягнения контроль естественной резистентности организма овцематок, биохимические, физико-химические, морфологические исследования крови (по вышеуказанным показателям).

Через 14 дней после ягнения овец определяли процент заболеваемости ягнят, полученных от овцематок опытной и контрольной групп. Определяли естественную резистентность организма овец, проводили биохимические, морфологические, физико-химические исследования крови.

Через 4 месяца после ягнения овец (отбивка ягнят) проводили оценку качества потомства (ягнят), полученных от овец обеих групп. Определяли процент сохранности поголовья, живую массу молодняка при отбивке, высоту в холке, косую длину туловища, глубину, ширину, обхват груди, пясти.

Анализ результатов проведенных исследований показал, что двукратное введение Лигфола в дозе 1 мл на овцематку не оказывает отрицательного влияния на животных до и после родов. Все показатели крови овец в процессе эксперимента находились в пределах физиологических норм. Установлено достоверное повышение количества эритроцитов в крови овцематок опытной группы в послеродовой период по сравнению с контролем. Данные сочетаются с уровнем гемоглобина, что подчеркивает усиление процессов кроветворения у животных после применения Лигфола.

Достоверная разница в показаниях общего белка на 14е сутки после родов подтверждает активацию обменных процессов, улучшение пристеночного пищеварения, клеточного метаболизма (что подтверждается повышением активности трансаминаз). Уровень резервной щелочности, глюкозы, железа не понизился в крови животных опытной группы.

На основании представленных данных можно утверждать, что введение Лигфола не провоцирует нарушений обменных процессов и дисфункций

В опытной группе овцематок бактерицидная активность сыворотки крови после введения препарата Лигфол увеличилась в динамике на 6,2% к 14 дню после родов (с 52,4% до 58,6%), в контрольной группе на 0,6%. Прирост показателя бактерицидной активности в опытной группе повысился в 9,4 раза по сравнению с контролем (Рис. 2).

Показатель лизоцимной активности сыворотки крови животных опытной группы увеличился после инъекций препарата в динамике на 1,57 % в контрольной на 0,68 %. Прирост показателя лизоцимной активности в опытной группе повысился в 2,3 раза по сравнению с контролем (Рис.3).

В результате проведения исследования маточной слизи животных установлено повышение факторов местной защиты организма овцематок в результате применения препарата Лигфол. Важность этих тестов обусловлена тем, что мукополисахариды слизистых оболочек гениталий играют важную местную защитно-барьерную функцию. С одной стороны, они адсорбируют микробы, клеточные элементы, продукты распада белков и микробов и этим механически очищают половые органы овец. С другой стороны, препятствуют проникновению вирусов в эпителиальные клетки, подавляют рост и развитие бактерий и грибов. Разрушение мукополисахаридов слизистых оболочек гениталий и, соответственно, маточной слизи способствует развитию воспалительных процессов в матке. У животных опытной группы в результате применения препарата Лигфол регистрировалось разрушение мукополисахаридов маточной слизи в 3 раза реже, чем у животных контрольной группы. Отмечено также увеличение в 1,4 раза уровня фагоцитоза нейтрофилов маточной слизи у овец опытной группы после ягнения по сравнению с животными контрольной группы. (Рис. 5).

Рис. 5 В ходе эксперимента было установлено, что после применения Лигфола у овец после родов в 1,5 раза повысился фагоцитарный индекс нейтрофилов маточной слизи по сравнению с животными, которым инъецировали физиологический раствор (Рис.6).

Таким образом, анализируя полученные результаты, мы пришли к выводу, что применение овцематкам перед родами адаптогена стресс-корректора Лигфола увеличивает общую резистентность организма беременных животных, повышает неспецифические иммунные факторы местной защиты.

При бактериологическом исследовании послеродовых маточных выделений от овцематок контрольной группы в 60% проб (в 9 из 15) были выделены микроорганизмы: стафилококки, гноеродная палочка, кишечная палочка, диплококки. В то время, как у животных опытной группы отмечено наличие указанных микроорганизмов в 20% проб (в 3 из 15).

Считаем, что применение Лигфола профилактирует патологии родов и послеродового периода, способствует рождению здорового жизнеспособного потомства. Подтверждением этого является отсутствие случаев заболеваемости овец опытной группы в процессе эксперимента. У всех животных благополучно прошли роды, не было зарегистрировано субинволюции матки, задержания последа, послеродовых эндометритов. Родились полноценные здоровые ягнята.

Имело место достоверное увеличение живой массы баранчиков и ярочек при рождении, полученных от овцематок опытной группы (в среднем 4,43 ± 0,33кг и 3,87 ± 0,12кг, соответственно) по сравнению с живой массой ягнят контрольной группы (4,17 ± 0,46 кг и 3,68 ± 0,33кг).

В результате анализа заболеваемости ягнят через 14 дней после родов в контрольной группе установлена заболеваемость 2 ягнят контрольной группы:

№1678 и № 1394, что составило 20% от количества животных в группе. У молодняка отмечалось отсутствие аппетита, депрессия, атаксия, диарея.

Фекалии жидкой консистенции, желто-серого цвета. Температура 39,50 и 39,90С, пульс 155 и 157, дыхание 47 и 54, соответственно. В дальнейшем, ягненок №1678 пал, а ягненок № 1394 в результате проводимого лечения выздоровел.

Таким образом, в результате проведенных исследований было установлено, что:

1. Двукратное введение Лигфола в дозе 1 мл на овцематку не оказывает отрицательного влияния на животных до и после родов. Все показатели крови овец в процессе эксперимента находились в пределах физиологических норм.

На основании представленных данных можно утверждать, что введение Лигфола не провоцирует нарушений обменных процессов и дисфункций внутренних органов, гомеостаза, не вызывает изменений в биохимической картине крови, характерных для токсигенных процессов.

2. Установлено достоверное повышение количества эритроцитов в крови овцематок опытной группы в послеродовой период по сравнению с контролем.

Данные сочетаются с уровнем гемоглобина, что подчеркивает усиление процессов кроветворения у животных после применения Лигфола.

3. Достоверная разница в показаниях общего белка на 14е сутки после родов подтверждает активацию обменных процессов, улучшение пристеночного пищеварения, клеточного метаболизма (что подтверждается повышением активности трансаминаз). Уровень резервной щелочности, глюкозы, железа не понизился в крови животных опытной группы.

4. При изучении показателей естественной резистентности организма животных отмечено повышение в опытной группе всех показателей:

лизоцимной, бактерицидной активности сыворотки крови, фагоцитарной функции в динамике проведения исследований.

5. В результате проведения исследования маточной слизи животных установлено повышение факторов местной защиты организма овцематок в результате применения препарата Лигфол.

6. Считаем, что применение Лигфола профилактирует патологии родов и послеродового периода, способствует рождению здорового жизнеспособного потомства.

Подтверждением этого является отсутствие случаев заболеваемости овец опытной группы в процессе эксперимента. У всех животных благополучно прошли роды, не было зарегистрировано субинволюции матки, задержания последа, послеродовых эндометритов. Родились полноценные здоровые ягнята.

3.5 Общепрофилактические и специальные ветеринарные мероприятия при симптоматическом бесплодии овцематок Общепрофилактические и специальные ветеринарные мероприятия В неблагополучных хозяйствах по инфекционным болезням овец с поражением репродуктивных органов нами проводился комплекс общепрофилактических и специальных ветеринарных мероприятий по следующей схеме.

Необходимость профилактики инфекционных болезней овец с поражением репродуктивных органов обусловлена зооантропонозным характером некоторых из них (листериоз, хламидиоз, сальмонеллез, кампилобактериоз) и определенной опасностью, которую они представляют для людей.

Проведение общих и специфических профилактических мероприятий предусматривало следующее:

Не допускался ввод вновь поступивших животных в общее стадо без 1.

предварительного карантинирования их в течение 30 дней.

Во время карантина проводили клиническое обследование овец и 2.

выявляли животных, являющихся скрытыми источниками возбудителей инфекционных заболеваний путем проведения комплексной диагностики.

Вели учет случаев абортов, мертворождения и падежа животных и 3.

направляли патматериал в ветлабораторию с обязательным бактериологическим исследованием, типизацией и идентификацией выделенных микроорганизмов.

При маститах проводили бактериологическое исследование молока.

Отбор и направление материалов на бактериологические исследования проводили в соответствии с инструкцией.

Оценивали условия содержания овец, осуществляли контроль на 5.

станциях искусственного осеменения.

Проводили технологические дезинфекции помещений, выгульных 6.

площадок, инвентаря, транспорта.

Проводили дератизацию на территории ферм и на прилегающих 7.

зонах, учитывая сезонную миграцию грызунов. Осуществляли комплекс противоклещевых мероприятий.

Повышали неспецифическую реактивность организма животных.

В случае угрозы заноса возбудителей болезни в хозяйство проводили 9.

профилактическую комплексную вакцинацию овец или использовали ассоциированные вакцины.

10. Вакцинировали животных против инфекционных заболеваний:

— при выявлении клинически больных овец с окончательно установленным диагнозом;

— при наличии абортов инфекционной этиологии;

— при выявлении микробоносителей;

— при наличии природных очагов и стационарного благополучия по инфекционным болезням.

11. При специфической профилактике инфекционных болезней учитывали составы выделенных ассоциатов возбудителей инфекции, эпизоотическую ситуацию.

В соответствии с разработанной нами схемой профилактических мероприятий на станции искусственного осеменения животных проводился контроль качества спермы.

Исследовали сперму от баранов-производителей возраста 2-3 лет (всего 10 проб). Определяли: цвет, запах, консистенцию, объем эякулята, густоту, активность, процент живых и мертвых спермиев, процент патологических форм, концентрацию спермы по общепринятым методикам. Проводили бактериологический анализ спермы производителей.

В результате проведенных исследований было установлено соответствие качества спермы баранов основным нормативным показателям: объем эякулята 1,0 мл, цвет белый с желтоватым оттенком, запах жиропота, густая, активность 9-10 баллов, концентрация 2,2-2,8 млрд/мл, живых спермиев 92-95%, патологических форм 2,0- 4,0 % (допускается до 14%).

Бактериологический анализ проб спермы от баранов-производителей показал следующее: в двух образцах была выделена культура кишечной палочки (не патогенная для белых мышей). В одной пробе выделена культура Staphylococcus aureus.

На пункте искусственного осеменения овец проводилась санитарная оценка технологических процессов. С помощью стерильного физиологического раствора делали смывы с подготовленной искусственной вагины, шприцакатетера и влагалищного зеркала. Определяли их бактериологическую загрязненность. Также определяли микробную и грибковую загрязненность воздуха лаборатории, манежа и помещения для производителей. Были выделены Streptococcus, E.coli серотипов 09, 078, Staphylococcus aureus.

Проводилась дезинфекция помещений после предварительной механической очистки овчарен и выгульных площадок, кормушек и поилок. В период ягнения дезинфицировали по мере необходимости родильные секции, клетки-кучки, групповые оцарки для маток с ягнятами (в случае аборта и падежа животных). Проводили контроль за качеством дезинфекции в соответствии с методикой, изложенной в действующих «Правилах проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора» (2002г).

С этой целью в опытном хозяйстве использовали средство Дезконтэн (организация-производитель ООО «ДЕЗКОН» г.Москва, Россия).

1. Дезконтэн — дезинфицирующее средство, содержащее в качестве действующего вещества тетраметилендиэтилентетрамин (35%), а также поверхностно-активные вещества (алкилдиметилбензиламмоний хлорид 8%, дидецилдиметиламмоний хлорид 7%), краситель (0,02%), отдушку (1%) и воду (до 100%).

По внешнему виду представляет собой прозрачную жидкость от светложелтого до светло-коричневого цвета со слабым специфическим запахом, смешивается с водой в любых соотношениях.

2. Дезконтэн выпускают расфасованным по 1,0; 5,0 или 10 л полиэтиленовых канистрах, укупоренные навинчиваемыми, плотно закрывающимися крышками.

3. Дезконтэн хранят в защищенных от влаги и солнечных лучей, хорошо вентилируемых, недоступных для посторонних лиц и животных помещениях, при температуре от 0 о С до 30°С.

Срок годности Дезконтэна при соблюдении условий хранения составляет 1 год со дня изготовления. Срок хранения рабочих растворов — 30 суток.

4. Дезконтэн обладает широким спектром действия в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий, вирусов и грибов.

Дезинфицирующая активность обусловлена его способностью проникать в бактериальные клетки и вирусы, взаимодействовать с аминогруппами пуриновых и пиримидиновых оснований нуклеиновых кислот, блокируя их матрично-генетическую функцию.

5. По степени воздействия на организм Дезконтэн относится к 3 классу умеренно опасных веществ в соответствии с ГОСТ 12.1.007-76. В насыщающих концентрациях паров мало опасен (4 класс по степени летучести). В концентрированном виде проявляет умеренно выраженное местнораздражающее действие на слизистые оболочки глаз и кожу. Обладает слабо выраженными кумулятивными свойствами и сенсибилизирующим действием.

В рекомендуемых для применения концентрациях, не вызывает раздражения органов дыхательных путей, слизистых оболочек глаз и кожи. Дезконтэн не обладает коррозионными свойствами, не портит изделия из пластика, резины и дерева, не обесцвечивает и не портит ткани, не фиксирует органические загрязнения.

Порядок применения препарата

1. Перед проведением дезинфекции проводили тщательную механическую очистку, мойку и обезжиривание обрабатываемых поверхностей, т.к.

органические загрязнения снижают дезинфицирующую активность средства.

2. Дезконтэн применяли для профилактической и вынужденной дезинфекции овцеводческих помещений, находящегося в них технологического оборудования, вспомогательных объектов овцеводства и инвентаря по уходу за животными;

3. Дезинфекцию проводили путем мелкокапельного орошения поверхностей помещений и технологического оборудования в отсутствие животных с использованием дезустановок.

Рабочие растворы готовили путем добавления соответствующих количеств Дезконтэна к водопроводной воде. При расчете концентрации рабочих растворов препарат принимается за 100%-ое вещество (Таблица 9).

4. Профилактическую дезинфекцию поверхностей овцеводческих помещений и технологического оборудования проводили 0,2-0,5% раствором при норме расхода 0,3 — 0,5л/м2 и экспозиции 6ч.

5. Допускалось проведение локальной дезинфекции отдельных свободных от животных станкомест в занятых овцеводческих помещениях, отдельных единиц оборудования и участков поверхности (столов, пола, стен и др.) при условии наличия вентиляции помещений и отсутствия людей и животных в непосредственной близости к обрабатываемым объектам.

6. По истечении установленной экспозиции обеззараживания кормушки, поилки и другие доступные для животных участки поверхностей, места непосредственного контакта с сырьем, продукцией животного происхождения, места возможного скопления остатков Дезконтэна обмывали водой. С остальных поверхностей смывания остатков Дезконтэна не требовалось.

Животных вводили в помещения после проветривания (открывали окна, двери, люки, включали вентиляцию) и полного исчезновения запаха.

7. В ходе исследований была определена кратность проведения дезинфекции животноводческих объектов. Установлено, что уровень микробной обсемененности, остается сравнительно низким на одинаковом уровне от 2х до 6ти суток. На 7е – 8е сутки происходит его резкое повышение более чем на 60-80%. Исходя из этого, данное мероприятие проводили каждые 7 дней.

8. Кроме того, установлено, что в первые 10 суток при систематическом применении препарата «Дезконтэн» после механической очистки и мойки горячей водой контаминация снижалась на 10-12% от первоначального уровня.

После систематической дезинфекции через 20-30 суток степень контаминации снижалась на 20-30% от первоначальной.

Проанализировав результаты сравнительных испытаний ряда дезсредств, проведенных организацией – производителем ООО «ДЕЗКОН» г.Москва, Россия совместно с ГНУ ВНИИВСГЭ (РАСХН), ФГУЗ Волгоградским НИПЧИ (Роспотребнадзор) и учитывая результаты собственных исследований мы пришли к выводу, что дезинфицируемое средство Дезконтен обладает высокой антимикробной активностью, способно обеспечить инактивацию микроорганизмов в короткие сроки при малых концентрациях действующих веществ. Препарат хорошо растворим в воде при температуре от 20С. Обладает низкой коррозионной активностью в отношении различных материалов и оборудования, низкой токсичностью для человека, животных. Стоимость одной обработки 1м2 при расходе 0,5л рабочего раствора на 1м2 невысокая, составляет 0,85-1,43 руб. Средство Дезконтен отвечает требованиям, предъявляемым к современным средствам дезинфекции для ветеринарии и может использоваться для профилактики инфекционных болезней овец.

В последнее время появился ряд новых дезинфицирующих средств, способных остановить распространение заболеваний. Данные средства легализованы органами Россельхознадзора для применения на территории Российской Федерации. Эффективность этих препаратов подтверждена широкими научными и производственными опытами.

Сравнительный анализ дезинфекционных средств, применяемых в ветеринарии.

В системе ветеринарной санитарии применяются дезсредства, предназначенные для проведения профилактической и вынужденной дезинфекции при болезнях бактериальной и вирусной этиологии I и II группы.

I группа – контроль по кишечной палочке.

II группа – контроль по золотистому стафилококку.

Критерием стоимости дезсредства является количество и концентрация рабочего раствора, необходимого для обработки 1м поверхности.

Количество и концентрация рабочих растворов зависит от группы устойчивости возбудителей (I и II) и материала обрабатываемой поверхности (бетон, металл, кафельная плитка и т.д.), а также времени инактивации бактерий и вирусов (Таблица 10).

Специфическая профилактика инфекционных болезней овец с поражением репродуктивных органов.

В период осеменения овцематок в опытном хозяйстве проводилась профилактическая иммунизация животных с использованием вакцины против листериоза овец.

Опыт проводили на 30 овцах в ОПХ «Темнолесское», Шпаковского района Ставропольского края. Перед постановкой опыта провели выборочное клиникогематологическое исследование. Установленные показатели соответствовали физиологической норме для данного вида животных: средняя температура тела 39,1 ± 0,10С, пульс в среднем был равен 80,5 ± 0,4 ударов в минуту, дыхание 20,4 ± 0,5. Термометрию и клиническое обследование овец проводили также и после вакцинации.

Для проведения опыта были сформированы 2 опытные и 1 контрольная группы по 10 животных в каждой. Животных иммунизировали перед осеменением. Перед вакцинацией сыворотки крови всех овец исследовали на листериоз в РА (для определения фона антител).

Первая группа – вводили внутримышечно 1,5 мл вакцины сухой живой ассоциированной против листериоза овец из штамма «АУФ» в область внутренней поверхности бедра. Через 10 дней проводили ревакцинацию животных той же вакциной в дозе 3,0 мл.

Вторая группа – вакцинировали аналогично и одновременно делали инъекцию Лигфола в дозе 1,0 мл на животное.

Третья группа – вводили физраствор внутримышечно в дозе 1 мл на животное.

С целью изучения динамики накопления антител при различных методах иммунизации в процессе опытов кровь для постановки РА с листериозным антигенами у овец брали также через 14, 30, 90 дней после иммунизации.

Определяли количество эритроцитов, гемоглобина, общего белка.

1:200 ± 15,8 1:280 ± 22,5 1:160 ± 15,6 2 L** — титр антител против листериоза овец.

В первой группе животных до иммунизации сыворотка крови оказалась негативной по отношению к возбудителю листериоза. Через 14 дней после вакцинации у овцематок выявились антитела против возбудителя листериоза в титре 1:160 (p 0,001). Максимальное накопление титров выявилось на 30 день после иммунизации и составило в среднем — листериозных 1:240 (p 0,05).

Через 90 дней после вакцинации титры антител удерживались на достаточном уровне, но имело место их снижение. Титр антител против листериоза составил 1:160 (p 0,001).

Во второй опытной группе овец достоверное накопление титров антител отмечалось на 14 день после иммунизации. Выявлены антитела против возбудителя листериоза в титре 1:200 (p 0,001), что выше аналогичных показателей у животных первой группы. Наибольшие титры установлены на 30ый день после вакцинации: против возбудителя листериоза 1:280 (p 0,05), что также превышает уровень антител в сыворотке крови овец первой группы.

Через 90 дней после иммунизации титры антител снижались и составили 1:160 (p 0,001).

В третьей опытной группе животных сыворотка крови оказалась негативной по отношению к возбудителю листериоза.

Анализируя полученные данные можно сделать вывод, что при иммунизации овец с использованием сухой живой ассоциированной вакцины против листериоза овец из штамма «АУФ» в сочетании с адаптогеном стресскорректором Лигфолом имеет место наибольшее накопление титров антител в сыворотке крови овец против возбудителей листериоза уже на 14 день после вакцинации, на 30 день отмечалось их максимальной повышение, на 90 день титры антител начинали снижаться.

Результатами исследований по изучению динамики гематологических показателей установлено, что при иммунизации животных количество эритроцитов и гемоглобина находилось в пределах физиологической нормы (Таблица 12).

Таблица 12 Динамика гематологических показателей опытных овцематок

Опыты показали, что в течение поствакцинального периода отклонений в общем состоянии организма овец второй опытной группы не наблюдалось, за исключением незначительного снижения аппетита у отдельных животных на первый день после вакцинации.

У животных 1 группы в течение 3-4 дней после вакцинации отмечалась припухлость на месте введения вакцины против листериоза в области внутренней поверхности бедра и незначительная хромота, которая усиливалась после ревакцинации животных. Температура тела повышалась в течение 1-2 дней на 0,5 — 1,00С после иммунизации и на 0,4 — 1,20С после ревакцинации.

3.6 Лечение овцематок при послеродовых эндометритах При заболевании овец послеродовыми эндометритами необходимо применять комплексные методы лечения. Схема проведения терапевтических мероприятий должна учитывать результаты диспансеризации, клинические проявления, степень тяжести заболевания и уровень резистентности организма животных. Основными средствами этиотропной терапии являются антибактериальные препараты, используемые в комбинации со средствами симптоматического и патогенетического лечения и иммуностимуляторами.

Применяются антибиотики пролонгированного и широкого спектра действия с учетом чувствительности возбудителей инфекции.

В процессе проведения лечебных мероприятий при послеродовых эндометритах овец в сельскохозяйственных предприятиях мы применяли следующие препараты.

1. Антибактериальные препараты

1.1. Байтрил – 5% раствор для инъекции; Энромаг – 5% и 10% раствор;

Энросепт – 5% и 10% инъекционный раствор.

Это антимикробные препараты широкого спектра действия для лечения инфекционных заболеваний сельскохозяйственных животных.

Активнодействующим веществом является энрофлоксацин, действующий на грамотрицательных микроорганизмов и микоплазм, в т.ч. эшерихий, сальмонелл, пастерелл, стафилококков, стрептококков, клебсиелл, псевдомонад, бордетелл, кампилобактерий, клостридий, коринобактерий, микоплазм.

Энрофлоксацин эффективен в отношении возбудителей, резистентных к тетрациклинам, аминогликозидам, макролидам, хлораморениколу, сульфаниламидам и триметоприму.

Указанные антибактериальные препараты быстро поступают в кровь, проникают практически во все органы и ткани, достигая максимальной концентрации через 0,5-1 ч после введения, которая сохраняется на протяжении 24 часов.

1.2. Тиломаг – 5% и 20% раствор для инъекций – антибактериальный препарат, содержащий в качестве действующего вещества антибиотик тилозин в водно-органическом растворителе и вспомогательные вещества.

Тилозин – антибиотик из группы макролидов.

Активен в отношении большинства грамположительных и грамотрицательных бактерий:

стафилококков, стрептококков, коринобактерий, клостридий, пастерелл, возбудителя сибирской язвы, псевдомонад, фузобактерий, спирохет, включая лептоспиру, хламидий, микоплазм и др. После однократной инъекции 20% раствора терапевтическая концентрация тилозина сохраняется в организме не менее чем в течение 20 часов.

1.3. Окситетрамаг – лекарственный препарат, содержащий в качестве действующего вещества антибиотик окситетрациклин, раствор для инъекций.

Активен в отношении многих грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, а также спирохет. Терапевтическая концентрация антибиотика сохраняется до 48 часов.

1.4. Римокс Л.А. – антибактериальный препарат пролонгированного действия в форме масляной суспензии для инъекций. 1 мл которого содержит 150г амоксициллина в виде тригидрата.

Амоксициллин является полусинтетическим пенициллином с широким спектром бактерицидного действия в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий, включая кишечную палочку, бактерии рода актинобациллюс, протеус, бордетелла, фузиформис, гемофилюс, некрофорус, клебсиелла, эризипелотрикс, пастерелла, стрептококки, стафилококки, сальмонеллы, клостридиум, коринебактериум и др.

Римокс Л.А. быстро проникает в органы и ткани, максимальная концентрация достигается через 2 часа после внутримышечного и подкожного введения препарата и сохраняется на терапевтическом уровне в течение 48 часов.

1.5. Тетразол Л.А. – антибактериальный препарат в форме раствора для инъекции, содержащий в 1 мл – 200 г окситетрациклина дигидрата.

Это антибиотик широкого спектра действия, действующий на большинство грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, некоторые виды микоплазм, спирохет, риккетсий, простейших и хламидий.

Данная пролонгированная форма антибиотика после однократной внутримышечной инъекции обеспечивает ее высокий уровень в крови и тканях в течение 3 суток.

2. Стимуляторы обмена веществ и иммуномодуляторы:

2.1. Катазал – 10% раствор для инъекций. Применяют для животных с целью профилактики и лечения нарушений обмена веществ, бесплодия и послеродовых осложнений, повышения сопротивляемости организма к различным заболеваниям и т.д. В состав препарата входит: бутафосфан, цианкобаламин, метил-4-гидроксибензоат. Уникальный стимулятор обмена веществ.

Гликопин – иммуномодулирующий препарат для животных, 2.2.

выпускается в форме таблеток, порошка и ампул для инъекций. Применяют для лечения и профилактики инфекционных заболеваний, для снятия поствакцинальных осложнений и стрессового состояния у животных, для повышения общей резистентности беременных самок и их приплода, сокращения периода инволюционных послеродовых процессов в матке.

2.3. Адаптоген стресс-корректор Лигфол. Это композиционный препарат, основным действующим началом которого являются гуминовые кислоты. В состав препарата входят: гуминовые кислоты, натрия пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная апирогенная вода.

Опыт применения нами указанного препарата овцематкам перед родами показал увеличение общей резистентности организма беременных животных, повышение неспецифических иммунных факторов местной защиты. Это облегчает ягнение, профилактирует патологии родов и послеродового периода, способствует рождению здорового жизнеспособного потомства.

Подтверждением этого являлось отсутствие случаев заболеваемости овец опытной группы (которым инъецировали Лигфол) в процессе эксперимента. У всех животных благополучно прошли роды, не было зарегистрировано субинволюции матки, задержания последа, послеродовых эндометритов.

Родились полноценные здоровые ягнята.

3. Из средств патогенетической терапии могут применяться: надплевральная новокаиновая блокада по В.В. Мосину – 0,5% раствор новокаина 40 мл;

пресакральная новокаиновая блокада – 1% раствор новокаина, 30 мл.

При лечении овцематок, больных гнойно-катаральным эндометритом рекомендуем проводить также этиопатогенетическую терапию — применять пресакральную новокаиновую блокаду в сочетании с антимикробными препаратами (с учетом чувствительности выделенных возбудителей инфекции) и внутриматочным введением лекарственных веществ (йодинол, спумосан, АСД фракция 3,2 и др.).

Для лечения овцематок с различными формами послеродовых эндометритов нами были разработаны и испытаны на животных, принадлежавших «ИП Манохин», Раменского района Московской области следующие схемы (Таблица 15).

источник