Бешенство у человека методы диагностики

Методы выявления антигенов. При бешенстве для экспресс-диагностики можно использовать методы флуоресцирующих антител (МФА), реакции преципитации (РП) в агаровом геле, методы иммуноферментного анализа (ИФА), полимеразной цепной реакции (ПЦР). Для прижизненной диагностики бешенства у человека требуется несколько тестов.

Определение антител к антигенам вируса бешенства. Выявление антител в сыворотке крови или в цереброспинальной жидкости — важный метод диагностики. Серологическое исследование рабиес-специфических антител проводится в сыворотке крови для определения пред- и постэкспозиционной вакцинации и определения времени бустерной иммунизации с целью повышения иммунного ответа.

Выделение вируса. Для выделения и идентификации вируса используют метод биопробы на белых мышах. Исследуемый материал суспендируют в физиологическом растворе, содержащем антибиотики и эмбриональную сыворотку крупного рогатого скота. Суспензия вводится интрацеребрально белым мышам массой 5–6 г. Для доказательства развития инфекции за мышами ежедневно наблюдают до 30-го дня после инокуляции. Мыши, у которых за этот период развивается заболевание, немедленно подвергаются эвтаназии, и ткани мозга исследуются методом прямой МФА.

Преимущество данного подхода состоит в возможности определить малые количества вируса бешенства в материале. Недостаток метода — необходимость многодневного (7–18 суток) ожидания между инокуляцией и проявлением первых признаков заболевания. Для сокращения инкубационного периода применяют мышей-сосунков. Для экспресс-диагностики можно использовать мышей в возрасте менее 3 дней: у мышей, забитых через 3 дня, уже выявляется антиген вируса в мозге, который можно выявить методом МФА.

Такой метод выделения вируса практикуется в качестве подтверждающего диагностического теста при отрицательных результатах по выявлению антигена и телец Бабеша – Негри и в случае укуса человека подозрительным на бешенство животным. Он обеспечивает надлежащую чувствительность и специфичность, т. е. расценивается на уровне диагностической значимости метода прямой иммунофлуоресценции. Кроме того, этот метод является основным для идентификации вариантов вируса и перспективен для разработки диагностических реагентов.

Выделение и идентификация вируса на культуре клеток. Основным недостатком выделения вируса при инфицировании лабораторных животных является длительность метода. Избежать этого можно при использовании культур клеток. Обычно для этих целей используют культуру клеток нейробластомы мышей, если нужно исследовать ткани головного мозга. Мозг суспендируют в культуральной питательной среде, суспензию наносят на монослой культуры клеток и инкубируют от одного до нескольких дней.

Чувствительность данной культуры к вирусу можно повысить обработкой ее ДЕАЕ декстраном. Монослой клеток затем отмывают, фиксируют на холоде ацетоном или смесью формалина с метанолом и исследуют методом иммунофлюоресценции. Если животное было инфицировано вирусом бешенства, то в монослое культуры клеток выявляются цитоплазматические включения антигена вируса бешенства.

Показано, что на клетках мышиной нейробластомы линии Na C1 300 в сочетании с МФА антиген вируса бешенства можно выявить через 2 дня. Чувствительность метода сравнима с методом изоляции вируса на мышах.

Хотя вирус бешенства обладает облигатной нейропатогенностью in vivo, он способен инфицировать широкий круг клеток-хозяев in vitro, что можно использовать для исследования других тканей и органов на наличие вируса бешенства. Установлено, что вирус бешенства размножается в клетках ВНК-21 и Vero, в первичных клетках куриных эмбрионов или почек хомяка. Показано, что адсорбция вируса и внедрение его в клетку происходят в течение 7 часов. Через 24–48 часов внутри клетки образуются новые вирусные частицы, через 72 часов происходит почкование их из клеточной оболочки в межклеточное пространство.

Для экспресс-диагностики бешенства могут быть использованы:

а) метод МФА — для выявления антигена вируса бешенства в отпечатках роговицы или заднего отдела шеи больного, содержащего луковицы волос;
б) метод ПЦР — для выявления РНК вируса в биоптатах тканей, слюне, спинномозговой или слезной жидкости;
в) метод ИФА — для выявления специфических антител (антигена) у больных с типичным или атипичным течением.
г) метод биопробы — для выделения вируса на ранних этапах заболевания или для выявления антител в крови или спинномозговой жидкости на поздних стадиях заболевания. Для экспресс-диагностики используется комплексный метод (биопроба + МФА), заключающийся в заражении исследуемым материалом 2-дневных новорожденных мышей и исследования их мозга на 3–4-е сутки в МФА.

Выбор методов прижизненной диагностики в значительной мере зависит от стадии болезни: метод, основанный на выявлении антигенов, как правило, обладает высокой чувствительностью в конце инкубационного периода, в течение первых нескольких дней заболевания, в то время как вируснейтрализующие антитела обычно появляются в спинномозговой жидкости и сыворотке крови после 7-10 дней от начала болезни.

Реакция иммунофлюоресценции. Метод основан на использовании антител, связанных с красителем, например, флюоресцеинизотиоцианатом. РИФ широко применяется для выявления вирусных антигенов в материале больных и для быстрой диагностики.

Метод обладает наиболее высокой степенью чувствительности, он положен в основу экспресс-диагностики и позволяет обнаруживать вирусные антигены в течение нескольких часов

Основные достоинство МФА: быстрота выполнения, высокая специфичность (100%). Затрачиваемое время на диагностику заболевания с его помощью — менее одного дня. Применяются прямой и непрямой варианты МФА.

Прямая иммунофлуоресценция остается наиболее предпочитаемым методом диагностики бешенства. Предметные стекла, содержащие мазки-отпечатки тканей мозга, или стекла с монослоем культуры тканей фиксируют в ацетоне в течение 1–4 часов. Затем препараты высушивают и обрабатывают флуоресцирующими поликлональными антинуклеокапсидными антителами (иммунофлуоресцентный реагент).

Этот реагент представляет собой конъюгат, приготовленный из специфических поликлональных антител IgG класса к нуклеокапсидному антигену вируса и флуоресцеина изоцианата (ФИТЦ). Специфические антитела получают путем гипериммунизации животных (кроликов, хомяков или лошадей) смесью эпитопов нуклеокапсида вируса.

В настоящее время для этих целей все шире используют мышиные моноклональные антитела к нуклеокапсиду вируса бешенства. После 30-минутной инкубации при 37° С диагностические препараты многократно отмывают физиологическим раствором и дистиллированной водой.

Антитела, меченные ФИТЦ, фиксируются только в местах локализации вирусных нуклеопротеидных антигенов. Затем препараты высушивают на воздухе и исследуют методом световой микроскопии, используя в качестве источника света ксеноновую лампу и соответствующий фильтр.

При непрямом варианте антиген сначала соединяют с неокрашенной специфической иммунной сывороткой. Затем на образовавшиеся нефлуоресцирующие комплексы антиген-антитело воздействуют меченой флуорохромом иммунной сывороткой, содержащей антитела к белкам специфической сыворотки. Непрямой вариант МФА наряду с выявлением антигена позволяет количественно определять антитела в исследуемой сыворотке путем соответствующего ее разведения.

Меченые ФИТЦ образования в клетках разных тканей выявляются в виде желто-зеленого флуоресцентного окрашивания на темном фоне (в виде округлой или овальной формы внутрицитоплазматических включений).

Иммуноферментный анализ. Метод основан на принципе сорбции белков на твердой фазе с последующим образованием комплексов антиген-антитело, выявляемых субстрат-индикаторным раствором. Добавляемый в лунки антиген специфически связывается с антителами. На слой антигена наносят исследуемые сыворотки в нужных разведениях. При наличии в них специфических антител последние связываются с антигеном. Для выявления связывания на слой антител наносят иммуноглобулин против глобулинов сыворотки людей, коньюгированный с пероксидазой хрена. Количество сорбирующего коньюгата пропорционально количеству связавшихся с антигеном антител сывороток людей. Это можно определить, используя индикаторный раствор (ортофенилилендиамин + перекись водорода), компоненты которого в результате действия пероксидазы коньюгата окрашивают жидкость в коричнево-желтый цвет. При обследовании неясных случаев применение ИФА дополнительно к методам РП или РСК позволяет увеличить достоверность лабораторной диагностики бешенства, благодаря большой чувствительности этого метода. Метод позволяет обнаруживать инфекционные и дефектные частицы.

Для определения антирабических антител в процессе вакцинации можно применять непрямой метод ИФА, используя в качестве антигена очищенный вирус, а для определения антител класса IgG в человеческой сыворотке — А-белок стафилококка, связанный с пероксидазой хрена. Результаты ИФА сравнимы с полученными в тестах вирусной нейтрализации на мышах. Метод позволяет выявлять присутствие IgМ в начале процесса иммунизации.

Иммуноферментные методы — весьма перспективны для выявления нуклеокапсидного антигена вируса при посмертной диагностике в тканях головного мозга. В их числе, например, быстрый иммуноферментный метод диагностики бешенства, основанный на приготовлении плашек сенсибилизированных антителами IgG изотипа к нуклеокапсиду первого серотипа, разведенных в карбонатном буфере.

Материал для исследования гомогенезируют в буфере или культуральной среде, осветляют центрифугированием, вносят в лунки и инкубируют в плашках. Фиксированный специфическими антителами нуклеокапсидный антиген идентифицируют добавлением пероксидазного конъюгата с антинуклеокапсидными противорабическими антителами иной видоспецифичности и хромогенного субстрата. Чувствительность метода составляет 0,8–1,0 нг/мл.

Этим методом можно выявлять антигены вирусов различных серотипов. Применение конъюгатов нуклеокапсидспецифичных антител, меченых биотином, повышает чувствительность метода до 0,1–0,2 нг/мл.

Методом ИФА успешно выявляется антиген нуклеокапсида [139], но материал, даже разложившийся, не должен фиксироваться формалином.

Метод полимеразной цепной реакции. Для экспресс-диагностики вируса бешенства и идентификации лиссавирусов наиболее удобен метод полимеразной цепной реакции (ПЦР). Метод ПЦР — самый надежный и быстрый для выделения вирионной РНК из любых проб, содержащих вирус в низкой концентрации. С его помощью можно создать много копий РНК вируса. Этот метод используется для подтверждения результатов МФА и для определения вируса в слюне, луковицах волос заднего отдела шеи и головы.

ПЦР основана на принципе естественной репликации ДНК. Суть метода заключается в многократном повторении циклов синтеза (амплификации) вирусоспецифической последовательности ДНК с помощью термостабильной Taq ДНК-полимеразы и двух специфических затравок, так называемых праймеров.

Каждый цикл состоит из трех стадий с различным температурным режимом. В каждом цикле удваивается число копий синтезируемого участка. Вновь синтезированные фрагменты ДНК служат в качестве матрицы для синтеза новых нитей в следующем цикле амплификации, что позволяет за 25–35 циклов наработать достаточное число копий выбранного участка ДНК для ее определения, как правило, с помощью электрофореза в агарозном геле.

Особенно высокая чувствительность ПЦР при использовании праймеров, комплементарных N-гену, когда удается выявлять РНК вируса в пробах, содержащих вирус в титре 10 МЛД50. Методом ПЦР можно выявлять РНК вируса даже в разложившемся патологическом материале.

В настоящее время разработаны и широко используются на практике подтверждающие (конфирматорные) тесты, такие как ПЦР в обратно-транскриптазном исполнении (ОТ-ПЦР). Метод ОТ-ПЦР — высокочувствительный и наиболее эффективный. РНК экстрагируется из тканей инфицированного вирусом органа, транскрибируется в кДНК, которая затем амплифицируется методом ПЦР. Для постановки ОТ-ПЦР необходимы праймеры, полученные к консервативным областям генома вируса бешенства. Обычно используются гены, кодирующие нуклеопротеин или N-белок.

Метод ПЦР высокоспецифичен и очень чувствителен. Является одним из наиболее точных тестов детекции рабического антигена, позволяет диагностировать бешенство даже при наличии в материале хотя бы одного вириона. В основе теста лежит комплементарное достраивание РНК-матрицы, осуществляемое in vitro с помощью фермента РНК-полимеразы. В последние годы ПЦР находит все более широкое применение для диагностики и мониторинга вирусных инфекций. Однако методика проведения сложна, дорогостояща и пока недостаточно унифицирована для рутинного применения.

Цитологические методы в настоящее время имеют ограниченное диагностическое значение, но при ряде инфекций по-прежнему должны применяться. Исследуются материалы аутопсии, биопсии, мазки, которые после соответствующей обработки окрашиваются и анализируются под микроскопом. При бешенстве — это выявление включений в цитоплазме клеток (тельца Бабеша – Негри).

Выделение вируса. Выделение вируса может быть необходимым для подтверждения результатов тестов по определению антигена и для более детальной характеристики изолятов. И хотя этот метод является одним из самых старых и трудоемких методов диагностики, сегодня выделение вируса с последующей идентификацией с помощью одного из современных методов (ИФА с моноклональными антителами или ПЦР) является наиболее достоверным методом диагностики, т. н. «золотой стандарт».

Результативность методов диагностики бешенства может варьировать в зависимости от ряда факторов (стадии болезни, сроков забора материала, качества полученных проб, условий их хранения, опытности персонала, качества реактивов и др.). Если положительный результат подтверждает бешенство, то отрицательный не всегда свидетельствует об отсутствии болезни. Поэтому при бешенстве эксперты ВОЗ рекомендуют использовать несколько тестов, особенно МФА в сочетании с биопробой на новорожденных (2–3 дневных) белых мышах.

Все работы с материалом, предположительно содержащим вирус бешенства, равно как и с животными, подозрительными на бешенство, должны проводиться с соблюдением мер личной безопасности. Медицинские работники и ветеринарные врачи должны работать в халатах, перчатках, масках.

По окончанию работы боксы обрабатывают 3% раствором перекиси водорода.

Флаконы, ампулы и инструменты, а также оставшиеся материалы, содержащие вирус бешенства, и всю посуду после работы обеззараживают автоклавированием в течение 1 часов при 1,5 атм (режим «убивки»).

Средства индивидуальной защиты обеззараживают кипячением или автоклавированием. Рабочую поверхность стола и руки обеззараживают дезраствором (0,5% раствор хлорамина).

источник

Далеко не каждый человек знает, как себя правильно вести после укуса животного. Некоторые отмахиваются от этой ситуации. Но промедление может стоить человеку жизни. Такое заболевание, как бешенство, не лечится. Однако спасти себя можно, вовремя проведя вакцинацию. Если взрослого или ребенка укусило животное, нужно узнать, как и где сдать анализ на бешенство у человека. Это будет подробно рассмотрено далее.

Анализ крови на бешенство у человека является практически единственным способом вовремя распознать наличие болезни в организме. Чтобы понимать, насколько серьезными могут быть последствия, нужно рассмотреть особенности этого заболевания. Бешенством называется недуг, вызванный вирусной инфекцией. Она поражает головной, спинной мозг. Без своевременного лечения болезнь приводит к смерти.

Бешенству подвержены все млекопитающие в природе. Вирус передается от одного организма к другому через биологические жидкости. Чаще всего это слюна. Люди в большинстве случаев заражаются вирусом в момент укуса животного. По статистике, чаще всего это бывают собаки, кошки, еноты, кролики, ежи, лисы, летучие мыши и т. д. Практически любое дикое или домашнее животное может быть носителем вируса.

Анализ на бешенство у человека после укуса позволяет выявить вирус еще до появления характерных симптомов. Стоит отметить, что даже если животное не имеет признаков бешенства, это еще не значит, что оно не является носителем инфекции. На первой стадии у него появляется усиленное слюноотделение. При этом появляется четкая боязнь воды. Настроение быстро меняется от угнетенного до агрессивного.

По статистике, в мире ежегодно от этого недуга погибает 55 тыс. человек. В нашей стране за последние 8 лет от бешенства умерло 75 человек. Проблема в том, что заболевание не поддается никакому лечению. Если не были предприняты меры сразу после укуса, смерть неизбежна. Даже при попадании слюны больного животного на слизистые оболочки вирус начинает развиваться в организме.

Есть ли анализ на бешенство у человека? Это довольно сложная диагностическая процедура, которая должна быть дифференцирована от других заболеваний. В Московской области, по статистике, основными носителями вируса являются дикие ежи и лисы. Заражение происходит в момент укуса человека, который собирает ягоды или грибы в лесу, а также людей на пикнике. Часто такие звери заражают бродячих собак или домашний скот. Уже от них вирус может передаваться человеку.

В 60 % случаев человек заражается от собак. Гораздо реже вирус передается от кошек (10 % случаев). В 24 % случаев бешенством заражаются из-за укуса лисы. Причем животное может выглядеть нормальным. Оно становится заразным за 3-10 дней до появления первых признаков бешенства.

После попадания в организм вирус стремительно распространяется по нервным стволам, достигая центральной нервной системы. Далее он по тем же путям попадает в периферийные участки. В результате поражается вся нервная система. Вирус по нервным стволам попадает и в слюнные железы, начиная выделяться со слюной. Скорость, с которой он продвигается в организме, составляет около 3 мм/ч.

Активно размножаясь в нервных тканях, вирус вызывает их отек, некротические изменения и кровотечения. Симптомы появляются постепенно. При появлении первых признаков бешенства у человека остается максимум 20 дней до наступления летального исхода. При этом в таком состоянии повлиять на болезнь нельзя. Это необратимый процесс. Только пока болезнь не успела достигнуть центральной нервной системы, ее можно победить путем введения специальных препаратов.

Анализ на бешенство у человека после укуса собаки или иного животного нужно сдать как можно раньше. Однако порой приходится предпринимать срочные меры до того, как будут получены результаты теста. Это заболевание не терпит промедления. Инкубационный период составляет от 30 дней до 3 месяцев. Причем этот процесс индивидуален. Известны случаи, когда инкубационный период длился всего 12 дней или растягивался до 1 года. Это зависит от места укуса или попадания вируса в организм.

Болезнь протекает в 3 стадии. На каждой из них появляются определенные симптомы. Первая стадия называется депрессией. В области укуса появляется жжение, зуд, боли, хотя рана может уже даже зажить. Иногда в этом месте возникает новое воспаление. Температура тела поднимается до 37,2 ºС. При этом появляются первые признаки психических нарушений. Человек чувствует страх, тревогу, тоску. Он замкнут, плохо спит. Эта стадия длится всего до 3 дней. Затем недуг переходит в стадию возбуждения.

На втором этапе протекания болезни появляется повышенная возбудимость и страх воды. При попытках пить глотательные мышцы болезненно сокращаются, наступает приступ удушья. Страх постоянно усиливается. В результате даже при упоминании о воде человек чувствует приступ спазма дыхательных и глотательных мышц.

На этой стадии человек остро реагирует на любой возбудитель. Даже из-за дуновения воздуха в лицо могут начаться судороги. Зрачки при этом расширены. Наблюдается сильное слюно- и потоотделение. На пике приступа человек чувствует ярость, агрессию, пытаясь навредить окружающим. Развиваются галлюцинации. Иногда наступает остановка дыхания и сердца. В промежутках между приступами сознание проясняется. Этот период длится 2-3 дня. Если за это время во время приступа не наступила смерть, бешенство переходит в третью стадию.

На этом этапе наступают параличи. Это говорит о необратимых изменениях в коре головного мозга, подкорковых образованиях. Наступает снижение двигательной и чувствительной функции. Раньше этот период ошибочно принимали за улучшение состояния из-за прекращения судорог и прочих проявлений второй стадии. Однако это далеко не так. Температура повышается до критической отметки 42 ºС. Спустя максимум сутки смерть наступает из-за паралича дыхательного центра и сердца. Чаще всего от момента появления первых симптомов до смерти проходит всего 5-8 дней.

Сдать анализ на бешенство у человека нужно после посещения инфекциониста. Диагностика проводится комплексно. Для этого проводится забор крови, мочи и тканей, на которые попала слюна. У человека, который заболел бешенством, в крови обнаруживается лимфоцитарный лейкоцитоз. При этом наблюдается анэозинофилия. Антиген к вирусу бешенства обнаруживается в отпечатках, взятых с поверхности роговой оболочки глаз.

Если была констатирована смерть, у человека берут анализ тканей аммонового рога. Здесь при наличии вируса обнаруживают тельца Бабеша-Негри.

Стоит отметить, что при диагностике наблюдаются схожие с другими заболеваниями проявления. Нужно определить, вызвано подобное состояние бешенством или такими заболеваниями, как столбняк, истероневроз, белой горячкой, отравлением стрихнином или атропином и т. д. Есть определенные отличия у подобных состояний.

Анализ крови на бешенство у человека позволяет избежать постановки неправильного диагноза. Это позволяет спасти ему жизнь при обнаружении других заболеваний. Если же диагноз подтвердится, помочь человеку будет невозможно.

Из-за незнания многие люди поступают неправильно после укуса животным. Вместо посещения врача-инфекциониста они стремятся сдать анализы. Стоит отметить, что даже в самых известных клиниках эту процедуру не проводят. Например, не получится сдать анализ крови на бешенство у человека в «Инвитро». Здесь человеку сразу же предложат обратиться к инфекционисту.

Существует ряд частных и государственных клиник, которые проводят подобные анализы. Диагностика очень специфична. В данном случае она не позволяет сначала выявить заболевание, а потом приступить к лечению. По этой причине анализ на бешенство у человека в «Инвитро» и прочих известных лабораториях сдать не получится. Лечение назначают в любом случае, если имеет место факт укуса животным.

Стоит отметить, что хоть сдать анализ на бешенство у человека в «Инвитро» не получится, можно выполнить подобную процедуру для животного. Если этот зверь домашний, у хозяина обязательно берут номер телефона и наблюдают за состоянием животного. Также проводят специальные анализы для таких питомцев. Чаще всего наблюдать за животным, которое укусило человека, невозможно (зверь часто убегает, найти его становится невозможно).

При появлении характерных симптомов врач назначит пройти обследование. Если человек не предпринял своевременных действий после укуса или попадания слюны на слизистые, открытые раны, диагностика позволит лишь установить факт развития этого недуга в организме.

Существует несколько вариантов, где сдать анализ на бешенство человеку. После посещения инфекциониста в случае необходимости следует обратиться в частную или государственную лабораторию. При появлении первых признаков болезни врач обязательно госпитализирует больного. Здесь у него берут на обследование кровь, мочу. Также обязательно проводится биопсия кожи с поврежденного участка.

Можно также сдать анализ в частной клинике. Например, подобную диагностику проводит в Москве «СитиЛаб». Стоимость анализа крови составляет около 350-380 руб. Стоимость анализа мочи составляет 350 руб. Стоимость взятия биоматериала оплачивается отдельно.

Также выявить вирус при появлении симптомов врачи могут при исследовании кожи, которая берется с затылка больного, из слезной, слюнной, спинномозговой жидкости.

Общий анализ крови позволяет исключить повышенный уровень СОЭ и лейкоцитарной формулы. Также определяются антитела, которые вырабатываются иммунитетом больного человека к возбудителю инфекции.

Могут быть взяты отпечатки с роговицы глаза. Одним из основных методов диагностики является проведение анализа ПЦР на исследование генетического материала вируса. При помощи электронной микроскопии исследуются ткани мозга.

Существуют и другие методы, которые применяются современной медициной при диагностике бешенства. Так, например, может быть назначена электроэнцефалограмма (ЭЭГ). Это позволяет оценить работу головного мозга, определить определенные отклонения в электрических потенциалах.

Анализ на бешенство у человека после укуса кошки, собаки или иного животного проводится в течение 7 рабочих дней. При этом правильный результат можно получить только после инкубационного периода заболевания. Поэтому нужно знать, как вести себя после укуса. Если такая неприятность произошла со взрослым или ребенком, нужно промыть рану проточной водой и обработать ее антисептиком.

Далее на поврежденную поверхность накладывается стерильная повязка. Пострадавший человек должен обратиться в больницу. Его осматривает инфекционист или травматолог. В этот же день пациенту вводится вакцина, которая способствует созданию иммунитета против бешенства. Пока вирус не успел проникнуть далеко, это позволяет эффективно бороться с ним.

Если животное, укусившее человека, домашнее, его наблюдают в течение 10 дней. При этом продолжается проведение вакцинирования. Препарат вводят каждому пациенту, который обратился за помощью к врачу, даже если травма произошла месяц или несколько месяцев назад.

Прежде чем будет сделан анализ на вирус бешенства у человека, проводится вакцинация. Препарат должен вводиться в соответствии с установленными правилами. Это позволяет сформировать иммунитет, предотвратив развитие болезни. Вакцина вводится в день обращения пациента к врачу, а затем на 3-й и 7-й день после контакта с животным. Если в течение 10 дней у домашнего питомца или дикого зверя не появились признаки бешенства, были проведены соответствующие анализы, которые не подтвердили наличие вируса в слюне, вакцинация прекращается.

Если наблюдение за животным невозможно или были выявлены признаки его инфицирования, вакцину продолжают вводить на 14-й, 30-й, 90-й день после контакта.

Кроме этого в место укуса вводят антитела, которые позволяют максимально быстро побороть вирус непосредственно в месте укуса. Этот метод применяется в первые часы после происшествия. Вещество нужно ввести не позднее, чем через 7 суток после контакта с животным.

Анализ на бешенство у человека не позволяет эффективно бороться недугом. Поэтому его проводят только в крайних случаях (при появлении характерных симптомов). Нужно знать, что есть люди, которые входят в группу риска. Для них обязательно проводится вакцинация раз в год.

Такие меры необходимо предпринимать жителям сельской местности, у которых есть непривитые животные. В группу риска попадают люди, путешествующие по развивающимся странам или просто выезжающие часто на природу, контактирующие с дикими зверями. К этой категории относятся охотники, звероловы, ветеринары, а также работники питомников и зоопарков. Вакцинацию проходят медицинские сотрудники, которые работают с вирусом в лаборатории.

Чтобы не потребовалось делать анализ на бешенство у человека или проходить вакцинацию, нужно придерживаться элементарных правил безопасности. Выезжая на природу с детьми, нужно объяснить малышам, как опасны могут быть дикие звери. Нужно отучить ребенка гладить бездомных котов и собак, прочих животных.

Если в доме живут коты, их не выпускают на улицу, чтобы избежать случайного заражения. Собак, которых выгуливают на улице, обязательно вакцинируют по всем правилам. Даже если человека укусило знакомое домашнее животное, нужно обратиться к врачу.

Рассмотрев особенности проведения анализа на бешенство у человека, можно понять, как правильно действовать после укуса или попадания слюны на слизистые. Это позволит избежать серьезных последствий.

источник

Бешенство (Б) – остро протекающая болезнь теплокровных животных, характеризующаяся поражением ЦНС. Восприимчивы домашние и дикие животные всех видов, а также человек.

Болезнь регистрируется в различных регионах земного шара. Не отмечено случаев распространения болезни в Австралии, Великобритании, Японии. Заболевание почти всегда заканчивается смертью. Имеются фактически документированные случаи выздоровления от бешенства человека и собак после экспериментальной инфекции.

Вирус бешенства (ВБ) относится к семейству Rhabdoviridae, роду Lyssavirus. В настоящее время установлено, что ВБ имеет 4 серотипа, что обусловлено, видимо, различием в составе мембранных белков. Все варианты ВБ в иммунобиологическом отношении родственны, но различаются по вирулентности. ВБ обладает ГА и ГАД свойствами. Между инфекционной и ГА активностью существует линейная зависимость. Животные, иммунизированные против бешенства, продуцируют ВНА, КСА, антиГА и литические (разрушающие клетки, зараженные вирусом в присутствии комплемента) АТ.

Диагноз ставят на основании эпизоотологических данных, симптомов болезни, патологоанатомических изменений (они имеют меньшее значение) и, главным образом, результа­тов лабораторных исследований.

Лабораторная диагностика заключается в исследовании головного мозга животных с целью выявления вирусного АГ в ИФ, РДП, обнаружении те­лец Бабеша — Негри и биопробе на белых мышах.

В Российской Федерации в настоящее время организовано производство наборов для диагностики Б в ИФ и РДП в ВНИТИБП и КазНИВИ.

Выделение вируса. В лабораторию для исследования направляют свежие трупы мел­ких животных, от крупных животных — голову или головной мозг. В некоторых случаях до­пускается консервирование головного мозга в 50%-ном глицерине. Труп или голова должны быть тщательно упакованы в полиэтиленовый мешок, мозг — в банку с притертой стеклянной или резиновой пробкой, залитой парафином. Материал упаковывается во влагонепроницае­мую тару. Для вирусологических исследований пригоден только не консервированный мозг. Необходимо помнить, что вскрытие трупа, извлечение мозга и другие операции с патологи­ческим материалом следует проводить в условиях стерильности и строгого соблюдения мер личной профилактики: прочно фиксируют голову животного, защищают руки 2-мя парами перчаток (хирургические и анатомические), для защиты глаз надевают очки, а на нос и рот-6-слойную марлевую повязку.

Лабораторные исследования материала на бешенство проводят вне всякой очереди; результаты немедленно сообщают врачу хозяйства и главному врачу района (города).

Индикация и идентификация вируса. Порядок проведения исследований: из каждого отдела головного мозга левой и правой сторон (аммонова рога, мозжечка, коры полушарий и продолговатого) готовят по 4 мазка-отпечатки для ИФ и обнаружения телец Бабеша — Негри; с мозговой тканью ставят РДП; при отрицательных результатах ставят биопробу.

Обнаружение специфических телец-включений. Мазки-отпечатки окрашивают по Селлерсу, Муромцеву или другими методами. После окрашивания препараты просматрива­ют в световом микроскопе с иммерсионной системой. Положительным результатом считают наличие специфических телец Бабеша — Негри (при окраске по Селлерсу — четко очерченные овальные или продолговатые гранулярные образования розово-красного цвета в протоплаз­ме, при окраске по Муромцеву — светло-фиолетовые с темно-синими включениями тельца Бабеша — Негри, чаще они расположены вне нервных клеток.

Наиболее характерная особенность телец Бабеша — Негри — их внутренняя структура, по­зволяющая абсолютно точно дифференцировать их. Внутри видны маленькие зернышки — базофильные зернистости темно-голубого, даже черного цвета величиной 0,2-0,5 мкм.

Диагностическая ценность обнаружения телец-включений для доказательства заражения ВБ общепризнана. Однако и у здоровых животных, в особенности у кошек и белых мышей, имеются образования, присутствие которых может вызвать диагностические затруднения. В отдельных случаях в мозге кошки можно с уверенностью дифференцировать подобные включения от телец Бабеша — Негри, и здесь рекомендуется воспользоваться методами иден­тификации, в особенности ИФ. Равным образом и у собак, погибших в результате отравле­ния змеиным ядом или поражения электрическим током, можно найти тельца-включения, напоминающие тельца Бабеша – Негри. Тельца Бабеша — Негри выявляют лишь в 65-85% случаев бешенства, поэтому отсутствие их не является отрицательным ответом, и материал исследу­ется в других тестах (ИФ, РДП, биопроба).

ИФ. Один из основных тестов при диагностике Б. При высококвалифицированном вы­полнении получают в 99-100% совпадения с методом биопробы. Обычно в диагностической практике используют прямой метод ИФ, который проводят с применением антирабического флюоресцирующего Ig. Фиксацию препаратов в охлажденном (8-10°С) ацетоне проводят не менее 4-х ч. В качестве отрицательного контроля используют мазки-отпечатки головного мозга здоровых белых мышей. Учитывают результаты визуально в люминесцентном микро­скопе на основе оценки интенсивности свечения комплекса АГ-АТ. АГ ВБ выявляется в ви­де ярких желто-зеленых или зеленых гранул различной формы и величины в клетках (чаще вне клеток). Диагноз считают установленным, если в нескольких полях зрения обнаружи­вают достаточное количество (не менее 10) типичных гранул с ярким зеленым свечением или множество мельчайших точек, В контроле подобного свечения не должно быть.

Для доказательства специфичности свечения комплекса АГ-АТ используют метод по­давления ИФ, который заключается в способности рабического АГ, связанного с нефлюоресцирующими AT, вторично не вступать в соединение с флюоресцирующими специфиче­скими AT. Для этого на фиксированные препараты, приготовленные из исследуемого голов­ного мозга, наносят 5%-ный антирабический нефлюоресцирующий Ig, выдерживают 30 мин при 37°С во влажной камере, промывают физраствором, а затем окрашивают флюоресци­рующим антирабическим Ig общепринятым прямым методом. В обработанных таким обра­зом препаратах флюоресценции не должно быть.

Метод ИФ дает возможность обнаруживать ВБ в клетках роговицы глаз и предвари­тельно поставить диагноз прижизненно: во время болезни животных, а также за 1-2 дня и более до клинического её проявления. Метод может быть использован для исследования по­дозреваемых в заболевании Б животных, а также клинически здоровых собак и кошек, по­кусавших людей и животных. Для этого готовят отпечатки с роговицы, соблюдая все прави­ла личной безопасности, раскрывают глазную щель животного большим и указательным пальцами и на слегка выпяченное глазное яблоко надавливают поверхностью предметного стекла, отступив 0,5 см от конца. Нужно следить, чтобы животное не моргало третьим ве­ком, так как со стекла удаляются эпителиальные клетки и получается некачественный мазок. С каждого глаза делают не менее 2 препаратов, содержащих по 2 отпечатка. Для кон­троля аналогичным образом готовят отпечатки роговицы от здоровых животных. Их можно приготовить в хозяйстве. Отпечатки высушивают на воздухе, фиксируют в ацетоне в тече­ние 4 ч при 4°С, упаковывают и отправляют в лабораторию. Окрашивают препараты, как при ИФ, по общепринятой методике.

В препаратах, полученных от больных животных или находящихся в конце инкубаци­онного периода болезни, в цитоплазме многих эпителиальных клеток наблюдаются разной формы ярко светящиеся гранулы разного размера — от пылевидных точек до 2 мкм и более. С целью получения достоверных результатов в каждом препарате просматривают по 50-100 клеток, а всего от животного — не менее 200-400 клеток. Результаты микроскопии считают положительными, если в отпечатках роговицы животного обнаруживают 11% и более кле­ток с характерными очажками свечения. Необходимо иметь в виду, что в препаратах от здо­ровых животных (контроль), вследствие аутофлюоресценции, могут встречаться единичные клетки с подобными по форме и свечению очажками.

Важно отметить, что ИФ дает возможность ускорить ответ при окончательной постанов­ке диагноза путем биопробы, поскольку диагноз при Б может быть установлен только на 4-8-й день после заражения мышей исследуемым материалом, а инкубационный период забо­левания мышей может достигать и 20 дн. ИФ может выявлять ВБ в тканях подчелюстной слюнной железы. Из подчелюстных слюнных желез готовят препараты-мазки, беря матери­ал не менее чем из 6 разных участков железы, так как распределение в ней вируса нерав­номерно. Часто, чтобы получить отпечаток, приходится делать сильный нажим, поскольку из-за обилия муцина на стекле остается мало материала.

Показана возможность идентификации ВБ в коже методом ИФ, С этой целью берут пробы кожи головы, а также фолликулы сенсорных и тактильных волос морды или лате­ральных сенсорных сосочков (на щеке собаки). Пробы хранят при -20 или -70°С. Из них де­лают криосрезы, которые обрабатывают флюоресцирующим глобулином. Результаты ИФ анализа, полученные при идентификации ВБ в коже, в высокой степени коррелируют с дан­ными, полученными при исследовании мозга того же животного. Показана близкая корре­ляция между обнаружением АГ вируса в пробах мозга и тканях губы методом ИФ.

РДП. Применяют для обнаружения АГ ВБ в неконсервированном головном мозге жи­вотных, павших от уличного бешенства, или мышат, используемых в биопробе. РДП ставят микро­методом на предметных стеклах, используя 1-1,5%-ныЙ агаровый гель по общепринятой ме­тодике. Наибольший процент положительных результатов выявляют при использовании следующего трафарета: А — аммонов рог (правая сторона); В — кора головного мозга (правая сторона); С — мозжечок (правая сторона);
Д — продолговатый мозг (правая сторона); + (плюс) — положительный контроль; — (минус) — отрицательный контроль; 1, 2, 3, 4 — лунки с разведе­нием специфического иммуноглобулина 1:2, 1:4, 1:8, 1:16 соответственно

Из каждого отдела головного мозга с помощью пинцета готовят гомогенную пастооб­разную массу, которую и помещают в соответствующие лунки. От мышей исследуют весь головной мозг. Из отделов головного мозга левой стороны готовят АГ аналогичным образом ( на каждую экспертизу в общей сложности требуется 4 предметных стекла с агаровьм ге­лем). Реакцию учитывают через 6, 24, 48 ч. При наличии 1 или 2-3 линий преципитации между лунками, содержащими АГ и иммуноглобулин, реакцию считают положительной.

РДП проста по выполнению и специфична, но процент выявления вирусного АГ в ис­следуемом материале составляет 45-70. При исследовании головного мозга мышей, полу­ченного при положительной биопробе, РДП выявляет до 100% случаев. Отсутствие в иссле­дуемом материале телец Бабеша — Негри, специфической флюоресценции и отрицательная РДП не дают основания исключить наличие вируса. В этом случае окончательный диагноз ставят по результатам биопробы на белых мышах с последующей идентификацией вируса.

Биопроба. Принято считать, что биопроба является более эффективным методом, чем обнаружение телец Бабеша — Негри, ИФ и др. Однако и она в отдельных случаях оказыва­лась отрицательной, несмотря на подтверждение диагноза Б путем обнаружения телец-включении и ИФ. Процент отрицательных результатов по биопробе колебался от 1,3 до 12.

Сведения о различной эффективности биопробы могут быть объяснены рядом факторов: выбора экспериментального животного, количества их в опыте, способа заражения, способа и срока хранения материала до поступления в лабораторию. Может играть роль и явление интерференции инфекционных частиц неактивными частицами, если для инокуляции ис­пользуют недостаточно разведенный материал.

В мозге и слюнных железах лисиц и скунсов, павших от бешенства, обнаружено вещество, ингибирующее инфекционность вируса, что не позволяет провести диагностику болезни у этих животных методом внутримозгового заражения мышей. Наличие ингибирующего вещества в исследуемом материале не препятствует выявлению вирусного АГ методом ИФ; для скун­сов и лисиц это самый чувствительный метод диагностики.

Из животных всех видов (кролики, морские свинки, взрослые белые мыши и хомячки), использованных для биопробы, многие отдают предпочтение мышам-сосунам, поскольку они более чувствительны к разным штаммам ВБ и менее опасны в работе. Сирийские хо­мячки по чувствительности не уступают мышам, но они менее доступны.

РСК. Выявление специфического АГ в РСК при диагностике бешенства применяется реже, чем другие методы. Из присланного для исследования мозга готовят АГ. Для этого мозговую ткань (особенно богаты АГ, связывающим комплемент, кусочки таламуса и стволового от­дела мозга) растирают в вероналовом буфере в соотношении 1:10 и оставляют при комнат­ной температуре на 1 ч, после чего суспензию инактивируют при 56°С в течение 5 ч. Такая обработка убивает вирус и снимает антикомплементарность мозговой ткани, не повреждая специфический АГ. Суспензию центрифугируют 15 мин при 3500 мин- 1 из надосадочной жидкости, которая представляет собой материал для исследования на наличие АГ, готовят 2-кратно возрастающие разведения от 1:2 до 1:64 и используют для исследования в РСК.

ИФА. В ИФА специфическое окрашивание АГ в клетках мозга павших от бешенства животных выявляют как в свежевзятых, хранившихся в глицерине, а также в пробах, хранившихся без глицерина при 20°С 8-18 ч. Данный тест пригоден для рутинной диагностики бешенства у животных, для выявления АГ ВБ в тканевых парафиновых срезах при фиксации препаратов 10%-ным р-ром формалина с рН 5,3 и последующей обработки препаратов, заключенных в парафин, пепсином.

В отличие от РН на мышах и в культуре клеток ИФА позволяет выявить AT у животных в течение нескольких часов, ИФА — наиболее перспективный лабораторный метод обнару­жения AT и индикации самого вируса. Экспресс-методом диагностики бешенства является тех­ника захвата и метод ИФ для выявления АГ ВВ. Доказано, что метод выявления АГ ВБ в парафинизированных срезах пероксидазо-антиперокисдазным методом значительно пре­восходит метод ИФА. В 1987 г. создан набор для быстрой энзимиммунодиагностики бешенства (RREID), приемлемый для эпидемиологических и лабораторных исследований.

РН. Используется редко. Рекомендуется модификация с разведением ВБ и постоянной дозы γ-глобулина. ИН 2 указывает на АГ специфичность выделенного вируса.

Вариантная идентификация с помощью монАТ. С помощью монАТ к гликопротеинам ВБ селектированы АГ варианты, среди которых выделены фенотипически термола­бильные (авирулентные) варианты. При использовании 2-х групп монАТ показано, что штаммы дикования отличаются от шт. Fixe (Пастера), CVS, Flury HEP, ERA и «утиных» штаммов по АГ детерминантам. Изучение с помощью монАТ 7-ми штаммов, выделенных от больных Б людей, позволило выявить определенные отличия их от вакцинного штамма в отношении АГ детерминант.

Общепризнано, что AT отличия между дикими штаммами удается обнаружить, исполь­зуя монАТ против нуклеокапсидного AT N, которые реагируют с цитоплазматическими включениями зараженных вирусом клеток; против гликопротеина (G АГ), которые реаги­руют с мембранами инфицированных клеток, лизируют эти клетки в присутствии компле­мента и нейтрализуют вирус. В связи с возможной АГ вариабельностью поверхностного гликопротеина ВБ из различных географических зон в качестве протективного АГ исполь­зовали рибонуклеопротеин, характеризующийся консервативностью АГ структуры. Таким образом, не только G белок, но и РНП ВБ обладают протективной активностью.

Серодиагностика и ретроспективная диагностика. Эти методы для бешенства нетипичны, поскольку используются только с целью проверки поствакцинального иммунитета. Для обнаружения и титрования поствакцинальных AT ис­пользуют РН, которую ставят общепринятым методом. В качестве АГ используют фиксиро­ванный ВБ. РН на клетках ВНК-21 была более чувствительной, чем непрямая ИФ при выяв­лении AT в сыворотках вакцинированных лис. Кроме того, предложены РТГА и ELISA.

РТГА. Пока еще не нашла широкого применения в диагностической практике из-за на­личия в сыворотках крови неспецифических ингибиторов, к которым ВБ высокочувствите­лен, а главное, ГА АГ, не подвергавшиеся достаточной очистке, обладали низкой чувстви­тельностью. Для приготовления ГА АГ ВБ предложено использовать шт. Москва, выращен­ный в культуре клеток ВНК-21, после его обработки сапонином с последующей очисткой и концентрированием. ГА отделяют от других компонентов вириона ультрацентрифугирова­нием. Полученный препарат имел степень очистки 99,92%, обладал высокой ГА активно­стью (1:128), хорошо сохраняющейся в течение 1 мес при рН 5-9.

Перед постановкой РТГА следует проводить умеренную 2-кратную трипсинизацию гу­синых эритроцитов для их сенсибилизации. При использовании 0,25%-ной взвеси трипси-низированных эритроцитов (лучше 10 7 клеток в 1 мл) чувствительность РТГА повышается в 4 раза. Для разбавления АГ и сывороток применяют боратно-солевой р-р (рН 9) с добавле­нием 0,4% бычьего сывороточного альбумина. Взвесь эритроцитов готовят в солевом р-ре с кислым рН, чтобы после соединения со смесью вируса и сывороток, рН которой 9, оконча­тельный рН установился бы в пределах 6,2. После внесения в лунки суспензии эритроцитов панель встряхивают, заклеивают прозрачной пленкой и ставят на лед. Результаты РТГА учитывают через 40-50 мин, а с эритроцитами 2-дн цыплят или макаки-резус — через 1-1,5 ч.

Разработан радиоиммунологический анализ, основанный на способности AT связы­ваться с меченым 125 1-АГ ВБ. Меченый IgG, выделенный из антирабической гипериммун­ной сыворотки, можно применять для обнаружения АГ ВБ твердофазным РИА. Лучшие ре­зультаты получены при использовании фосфатно-солевого р-ра (рН 6,0) с ионной силой 0,01 М и меченого IgG с активностью 200-250 тыс. имп./мин.

Твердофазный конкурентный РИА применим для выявления антирабических AT в сы­воротке и гибридомных супернатантах.

Дифференциальная диагностика. Необходимо исключить болезнь Ауески, при кото­рой больные животные неагрессивны, не бывает извращения аппетита. У собак исключают нервную форму чумы. Подозрение на бешенство может возникнуть при инфекционном энцефаломие­лите лошадей. Комплекс лабораторных исследований позволяет поставить точный диагноз на бешенство. Предложен новый метод дифференциации различных штаммов ВБ, основанный на рестриктазном расщеплении продуктов амплификации в ПЦР сегмента гена N.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

источник

Наступает лето, наши дети все больше времени будут проводить на свежем воздухе, в парках и скверах, а кто-то вообще отправится за город — на дачу, а деревню, в детский лагерь. И везде существует опасность, о которой мы мало задумываемся: смертельное заболевание — бешенство.

Можно ли заразиться бешенством, если кормить белок в парке? Правда ли, что после укуса животного нужно ставить 40 уколов в живот? Бывают ли бешеные голуби? На эти и многие другие вопросы отвечает биолог Екатерина РОМАНОВА (Woda).

Бешенство — это смертельно опасное инфекционное заболевание, которым болеют теплокровные животные, в основном млекопитающие (в том числе человек) и реже — птицы. Возбудитель — вирус бешенства (Lyssavirus семейства Rhabdoviridae). В разных источниках указано разное число существующих в природе видов (генотипов) вируса этой группы (7, 11, 80), и все они опасны для человека.

” Распространено бешенство по всему земному шару, охватывает 150 стран на всех континентах, кроме Антарктики, но абсолютное большинство смертельных случаев (95%), зарегистрировано в Азии и Африке.

На международном уровне контроль и координация региональных программ по борьбе с бешенством осуществляется следующими организациями: ВОЗ, Всемирная организация здравоохранения животных, Продовольственная и сельскохозяйственная организация ООН и Глобальный альянс по борьбе против бешенства, которые учредили партнерство «Объединенные против бешенства» (“United Against Rabies”) для выработки общей стратегии, цель которой — нулевая смертность людей от бешенства к 2030 году.

Смертность людей от бешенства напрямую зависит от социально-экономического благополучия региона, от доступности медицинской помощи, от профилактических мероприятий, которые проводятся (или наоброт не проводятся) в разных странах.

” По данным ВОЗ, 80% случаев гибели человека от бешенства происходят в экономически неблагополучных регионах, преимущественно в сельской местности, а основными причинами является слабая информированность населения, недостаточные меры профилактики и ограниченный доступ к медицинской помощи (в частности, к постконтактной вакцинации от бешенства).

Таким образом, шансы выжить при заражении бешенством напрямую зависят от действия целевых программ в регионе и их финансирования.

” К сожалению, в число неблагополучных по бешенству территорий входит и Россия — по сведениям Роспотребнадзора, в нашей стране около 250 тысяч человек ежегодно нуждаются в антирабической терапии.

В марте прошлого года пресс-служба ведомства сообщила о неудовлетворительных мерах профилактики бешенства на территории России, о тенденции возникновения новых очагов заболевания и об увеличении числа неблагополучных по бешенству регионов.

Бешенство — природно-очаговое заболевание, вирус сохраняется в окружающей среде, циркулируя в популяциях диких животных. Человек может заразиться от больного животного, как от дикого, так и от домашнего, но.

” 99% зарегистрированных в мире случаев заражения человека бешенством приходится на укусы собак (по данным ВОЗ).

Летучие мыши также являются одним из природных резервуаров бешенства. Генотип вируса бешенства, поражающий летучих мышей, редко выходит за пределы их популяций, но все же известны случаи заражения человека и плотоядных животных от летучей мыши. При подготовке статьи мне не удалось найти указания на документированные случаи заражения человека от грызунов и зайцеобразных (но это не значит, что их не бывает, поэтому при укусе мерами профилактики пренебрегать нельзя).

” Основной путь передачи вируса человеку от зараженного животного — слюна, попавшая в рану во время укуса. Но заражение может произойти и без укуса, если слюна больного животного попала на повреждённый участок кожи — свежую ссадину или царапину (а теперь поднимите руки, кого в детстве учили «дай собачке облизать ранку, чтобы скорее зажило»).

Через неповреждённую кожу вирус проникнуть не может. Само животное может заразиться не только через укус, но также если съест больного грызуна или летучую мышь.

Другой путь заражения плотоядных животных бешенством — не напрямую от другого (инфицированного) животного, а при поедании падали, вирус бешенства сохраняется в мертвых тканях и органах около 90 дней. В исключительных случаях возможно воздушно-капельное заражение бешенством при попадании микроскопических капель инфицированной слюны на слизистые оболочки человека или животного. Например на территории Северной Америки описан случай бесконтактного заражения бешенством после посещения пещеры, в которой обитает большая колония летучих мышей.

Что касается домашних животных, наибольшую опасность для человека представляют безнадзорные или одичавшие собаки, но и от любимого домашнего питомца можно ожидать подвоха, особенно если он не привит: собака, поймавшая больное животное (или попытавшаяся поймать и укушенная в процессе, или съевшая «какую-то тухлятну» на прогулке), котик, удачно поохотившийся на балконе на летучую мышь (или не очень удачно, но контакт «кровь-слюна» состоялся). А если непривитый питомец часто выгуливается без присмотра хозяев (что является распространённой практикой в нашей стране), то шансы заразиться от него бешенством примерно такие же, как шансы заразиться от бродячей собаки.

Бешенство — болезнь коварная, её легко пропустить. Во-первых, инфицированное вирусом животное становится заразным до появления клинических признаков болезни и характерных изменений в поведении. И его укус (а тем болеее облизывание) можно запросто не распознать как опасный, требующий антирабической профилактики, особенно если это знакомое животное или собственный питомец. Во-вторых, у бешенства довольно длительный инкубационный период, и эпизод контакта с инфицированным животным может быть уже начисто забыт к моменту появления симптомов. В-третьих, симптомы бешенства неспецифичны и не позволяют однозначно диагностировать заболевание на основе только клинических проявлений (особенно если об укусе пациент не помнит).

” Мишень для вируса бешенства — нервная система. Вирус мигрирует от места укуса в головной мозг не по кровеносным сосудам, а по нервным клеткам и их отросткам, скорость его распространения довольно низкая. Этим объясняется длительный (в типичном случае) инкубационный период заболевания.

Симптомы поражения нервной системы появляются у человека или животного только после того, как вирус «дополз» до головного мозга, успел размножиться в его клетках и начал своё путешествие по организму в обратном направлении — от центральной нервной системы к периферии, в мышечную ткань, слюнные железы, нервные окончания. После появления симптомов поражения мозга заболевание неизлечимо.

” Диагностика бешенства лабораторными методами на начальных этапах течения болезни затруднена, поскольку на стадии миграции от места укуса к головному мозгу вирус остаётся «невидимым» для иммунной системы, и специфические антитела в крови отсутствуют.

На стадии выраженных клинических проявлений методы диагностики бешенства основаны на выделении вируса или его нуклеиновых кислот из инфицированных тканей, также используется тест на присутствие специфических антител в спинномозговой жидкости. При посмертной диагностике бешенства у человека и животных классическим признаком являются тельца Негри, присутствующие в цитоплазме нейронов на препаратах головного мозга, но в настоящее время наиболее распространённым и надёжным методом диагностики является тест на флуоресцентные антитела.

Инкубационный период бешенства в среднем составляет 60-90 дней, но может протекать быстро (одна или несколько недель) или, наоборот, долго (до года, а в исключительных случаях и дольше).

” Длительность инкубационного периода зависит от места заражения, в общем случае — чем ближе к голове, тем скорее вирус достигнет головного мозга, тем короче инкубационный период (самая опасная ситуация — укусы на лице и шее).

Также имеет значение иннервация повреждённого участка, чем больше нервных окончаний на нём располагается, тем короче инкубационный период. Другие факторы, влияющие на длительность инкубационного периода — размер раны (чем обширнее рана и глубже укусы, тем короче инкубационный период) и концентрация вируса в слюне животного, от которого произошло заражение.

Существует две основных формы бешенства. Для человека характерна энцефалитная форма (классическая, клинические проявления — энцефалит, менингоэнцефалит), по данным ВОЗ на нее приходится 80% случаев заболевания человека.

” Первые симптомы энцефалитной формы — повышение температуры, а также боль, жжение или покалывание в месте укуса.

По мере прогрессирования заболевания, появляется гиперактивность, периоды возбуждения чередуются с нормальным состоянием, развивается гидро- или аэрофобия. Без терапии летальный исход наступает через несколько дней после появления симптомов поражения центральной нервной системы.

Паралитическая форма имеет большее распространение среди животных, но и у человека тоже встречается. Официальные данные о распространении этой формы течения бешенства у человека могут быть занижены из-за нетипичных (и неспецифических) симптомов, а также из-за ошибок диагностики.

” При паралитической форме характерно онемение мышц в месте инфицирования, впоследствии — постепенно распространяющийся паралич. Смерть наступает от дыхательной недостаточности.

Бешенство неизлечимо после появления выраженных симптомов заболевания. Во всём мире известны лишь единичные случаи счастливого исцеления на этой стадии, и в каждом из зарегистрированных случаев заражение происходило от летучей мыши. Экспериментальное лечение бешенства на поздних стадиях (протокол Милуоки) подразумевает ввод пациента в искусственную кому. Первый случай полного излечения от бешенства после появления симптомов поражения нервной системы произошёл в 2004 году в США, пациенткой была пятнадцатилетняя Джина Гис, заболевшая бешенством после укуса летучей мыши. Последующие документированные эпизоды применения этого подхода для лечения бешенства показали крайне низкую эффективность. Возможно, в будущем методика будет усовершенствована и покажет хорошие результаты, но пока ещё рано говорить о том, что человечество изобрело способ вылечить бешенство.

На данный момент не зарегистрировано ни одного случая успешной терапии бешенства на стадии выраженных симптомов поражения мозга в случае заражения от плотоядных животных (собак, кошек, хорьков, лисиц, енотов, барсуков, ежей, енотовидных собак и т.д.). И всё же в современном мире от бешенства можно легко спастись, если принять меры как можно скорее после того как вас укусило или облизало животное, дикое или домашнее, о котором у вас нет достоверных сведений, привито ли оно от бешенства.

” После подозрительного контакта необходимо срочно промыть и продезинфицировать рану (ссадину, царапину), в которую попала слюна животного.

Дезинфекция раны считается способом снизить риск инфицирования, замедлить проникновение вируса в нервные окончания, стандартная рекомендация — промывать место укуса водой с мылом 15 минут, а затем нанести любой дезинфицирующий раствор.

После дезинфекции раны следует незамедлительно обратиться в медицинское учреждение за постэкспозиционной вакцинацией.

” Схема постконтактной антирабической профилактики включает в себя шестикратное введение вакцины (в день обращения, на третий, седьмой, четырнадцатый, тридцатый и девяностый день).

Стандартные рекомендации в России — исключение алкоголя и физической активности, однако в инструкциях к вакцинам и рекомендациях ВОЗ отсутствуют указания на необходимость ограничения приёма какой-либо пищи и напитков (в том числе спиртных), а также физической активности, посещения сауны и солярия. Есть даже мнение, что ограничение употребления спиртного русские врачи ввели, чтобы дисциплинировать пациентов, которых праздничные возлияния могли заставить забыть о необходимости проведения очередной процедуры.

Однако эффективность антирабической вакцинации может снижаться на фоне приёма других лекарственных препаратов (например, кортикостероидов, иммунодепрессантов).

” Помимо введения антирабической вакцины, может также понадобится антирабический иммуноглобулин — решение о необходимости о его использовании принимает лечащий врач.

Согласно рекомендациям ВОЗ, объём постэкспозиционной профилактики бешенства определяется характером взаимодействия с потенциально больным животным, видом животного, местом укуса и площадью поражения.

” Если контакт с животным прошёл без укуса или облизывания повреждённых участков кожи, профилактические меры не требуются.

Если контакт с животным представлял собой покусывание голой кожи, остались царапины и мелкие ссадины, необходима срочная дезинфекция повреждёных участков и введение антирабической вакцины.

Если животное укусило, облизало рану или царапину, если его слюна попала на слизистые оболочки, а также если состоялся контакт с летучей мышью, рекомендовано введение антирабической сыворотки, антирабического иммуноглобулина, обработка раны.

В некоторых русскоязычных источниках указываются такие показания для введения иммуноглобулина как множественные укусы, укусы на лице и на шее, контакт с животным того вида, который в данном регионе является наиболее распространённым переносчиком бешенства. Перед введением иммуноглобулина рекомендована подкожная проба разбавленным препаратом для определения индивидуальной чувствительности к его компонентам.

” Профилактическая или постконтактная вакцинация — единственный надёжный способ спасения от бешенства после укуса зараженного (или потенциально зараженного) животного. Благодарить за эту возможность человечество должно выдающегося учёного Луи Пастера, вакцина от бешенства — это одно из наиболее известных его открытий и изобретений.

Первого в истории человека, которому удалось спастись от этой смертельной болезни, звали Йозеф Майстер, он получил двухнедельный курс вакцины в девятилетнем возрасте. Первая вакцина от бешенства представляла собой высушенные фрагменты мозга инфицированного кролика (ослабленный вирус).

Современные антирабические вакцины производят на основе куриных эмбрионов, а также клеточных культур разных видов животных (культуральные антирабические вакцины). Культуральные антирабические вакцины выпускаются в одноразовых ампулах, подходят как для профилактической, так и для постконтактной (постэкспозиционной) вакцинации, вводятся внутримышечно или подкожно и, по данным ВОЗ, помогают предотвратить 272000 смертей ежегодно на территории Африки и Азии. Препараты для вакцинации содержат инактивированный вирус, безопасны и легко переносятся, побочные реакции слабо выражены и кратковременны.

” Применение вакцин разрешено во время беременности и совместимо с грудным вскармливанием.

Основным противопоказанием к применению культуральной вакцины является предыдущая тяжёлая реакция на какой-либо её компонент (но такие случаи отмечаются крайне редко). Для постконтактной вакцинации противопоказаний нет, так как без вакцины заболевание приводит к летальному исходу в ста процентах случаев.

” В России зарегистрированы шесть антирабических вакцин и четыре антирабических иммуноглобулина.

В некоторых странах до сих пор производятся и используются антирабические вакцины на основе нервных тканей животных. Эти препараты существенно хуже культуральных вакцин, требуют больше инъекций для постконтактной профилактики, отличаются более выраженными побочными реакциями, меньшей интенсивностью иммунного ответа, и официальная позиция ВОЗ содержит рекомендации по замене устаревших вакцин современными, более надёжными и безопасными. Антирабические иммуноглобулины представляют собой очищенную и концентрированную белковую фракцию сыворотки крови человека или лошади, часто переносятся хуже, чем вакцина, могут вызывать выраженные побочные реакции.

Принцип действия постконтактной (постэкспозиционной) вакцинации основан на особенностях распространения живого вируса в организме человека. Пока вирус мигрирует от места инфицирования к клеткам головного мозга, он практически «невидим» для иммунной системы — антитела начинают вырабатываться только после того, как вирус размножился в клетках головного мозга.

” Без вакцинации начало выработки антител примерно совпадает с окончанием инкубационного периода и появлением первых клинических признаков поражения головного мозга. При вакцинации иммунный ответ происходит гораздо быстрее.

Антитела начинают вырабатываться уже через две недели после введения первой дозы вакцины, их максимум приходится на окончание инкубационного периода, и организм получает защиту от живого вируса раньше, чем тот доберётся до органа-мишени. Поскольку вакцинация после укуса — это фактически бег наперегонки с живым вирусом при его продвижении к органу-мишени, важно начать курс как можно раньше, в идеале в день укуса, или хотя бы не позднее двух недель после контакта с инфицированным (или предположительно инфицированным) животным. Каждый пропущенный день снижает шансы на успех и повышает вероятность летального исхода. Если есть основания полагать, что инкубационный период с большой вероятностью будет коротким (обширные поражения при укусе, укус недалеко от головы), или если после укуса прошло много времени, антирабическую вакцину дополняют антирабическим иммуноглобулином, который начинает действовать раньше, чем в организме после вакцинации начнут вырабатываться собственные антитела. Антирабической иммуноглобулин вводят для формирования пассивного иммунитета на тот период, пока иммунная система не начнет вырабатывать собственные антитела.

” Курс постконтактной вакцинации можно прервать, если после укуса получены достоверные сведения, что укусившее животное не инфицировано бешенством.

Вакцинация после укуса помогает избежать гибели людей от бешенства, но эффективная профилактика этого заболевания в неблагополучных регионах должна проводиться комплексно, на системном уровне и включать в себя следующие меры:

• Ежегодная массовая вакцинация домашних животных, в первую очередь собак. В соответствии с рекомендациями ВОЗ, в неблагополучных по бешенству регионах должно быть вакцинировано не менее 70% домашних животных, чтобы разорвать цикл передачи вируса человеку от домашнего животного. Выполнение этого условия подразумевает целевое финансирование, доступную вакцинацию, просветительскую работу.

• Карантинные мероприятия при выявлении заболевших людей и/или животных.

• Вакцинация диких животных. Технически введение вакцины диким животным осуществляется орально, с помощью съедобных приманок. Этот метод вакцинации основан на наблюдениях о заражении животных бешенством после поедания падали. Инактивированный вирус в составе вакцины также успешно, как и живой, проникает в организм животного оральным путём, и вакцина работает не хуже, чем при её инъекционном введении. Регулярное разбрасывание приманок с вакциной для диких животных в местах их обитания позволяет снизить заболеваемость диких животных, уменьшить естественные очаги заболевания, предотвратить миграцию вируса из природных «резервуаров» к домашним животным и человеку.

• Контроль числености бродячих и безнадзорных животных, в первую очередь собак, контроль за соблюдением правил содержания домашних животных. В человеческих поселениях безнадзорных животных быть не должно, недопустимы также самовыгул питомцев, «прикармливание» бездомных животных. Стаи бродячих собак, бездомные кошки и домашние питомцы на самовыгуле для городского человека являются более надёжным источником заражения бешенством, чем дикие животные. О проблемах контроля численности бездомных собак (и в меньшей степени кошек) в разных регионах России можно говорить много, это одна их «холиварных» тем для любого форума, но факт — системного решения этой проблемы в нашей стране пока нет, как нет и реально работающих механизмов обеспечить массовое соблюдение правил содержания домашних животных.

• Контроль численности синантропных (живущих рядом с человеком) грызунов.

• Профилактическая вакцинация людей, подверженных повышенному риску заражения бешенством. Помимо людей, для которых инфицирование бешенством является профессиональным риском, профилактическая вакцинация необходима перед путешествием в неблагополучные по бешенству регионы, особенно если предполагается проводить время на природе.

(Все статистические данные и практические рекомендации взяты из официальных источников — сайты ВОЗ, Роспотребнадзора)

источник