Меню Рубрики

Вирус бешенства нуклеиновая кислота

Вирусные заболевания возникли в глубокой древности, однако вирусология как наука начала развиваться в конце XIX века.

В 1892 г. русский ученый-ботаник Д. И. Ивановский, изучая мозаичную болезнь листьев табака, установил, что заболевание это вызывается мельчайшими микроорганизмами, которые проходят через мелкопористые бактериальные фильтры. Эти микроорганизмы получили название фильтрующихся вирусов (от лат. virus — яд). В дальнейшем было показано, что имеются и другие микроорганизмы, проходящие через бактериальные фильтры, поэтому фильтрующиеся вирусы стали называть просто вирусами.

Вопрос о происхождении вирусов является предметом многих исследований и дискуссий. Одни ученые предполагают, что вирусы являются потомками неклеточных форм живых паразитических микроорганизмов. Другие считают, что вирусы возникли в результате регрессивной эволюции одноклеточных микроорганизмов. Третьи думают, что вирусы произошли из клеточных элементов, ставших автономными системами.

Большой вклад в изучение вирусов внесли советские вирусологи: М. А. Морозов, Н. Ф. Гамалея, Л. А. Зильбер, М. П. Чумаков, А. А. Смородинцев, В. М. Жданов и др.

Вирусы — это неклеточная форма существования живой материи. Они очень малы. По образному выражению В. М. Жданова «величину их по отношению к величине средних бактерий можно сравнить с величиной мыши по отношению к слону». Увидеть вирусы стало возможным только после изобретения электронного микроскопа.

В настоящее время для изучения вирусов используют много методов: химические, физические, молекулярно-биологические, иммунобиологические и генетические.

Все вирусы подразделяются на поражающие человека, животных, насекомых, бактерии и растения.

У вирусов наблюдается большое разнообразие форм и биологических свойств, однако все они имеют общие черты строения. Зрелые частицы вирусов называют вирионами.

В отличие от других микроорганизмов, содержащих одновременно ДНК и РНК, вирион содержит только одну из нуклеиновых кислот — либо ДНК, либо РНК.

Нуклеиновая кислота вирусов может быть однонитчатой и двунитчатой. Почти все вирусы, содержащие РНК, имеют в своем геноме однонитчатую РНК, а содержащие ДНК — двунитчатую ДНК. В соответствии с двумя типами генетического вещества вирусы подразделяют на РНК- и ДНК-содержащие. К ДНК-содержащим относятся 5 семейств, РНК-содержащим — 10 семейств.

* ( Здесь приведены данные, касающиеся только некоторых из патогенных для человека вирусов.)


Классификация вирусов

Структура вириона. В центре вириона находится нуклеиновая кислота, которая окружена капсидом (от греч. kanca — ящик). Капсид состоит из белковых субъединиц, называемых капсомерами. Зрелый вирус по химической структуре является нуклеокапсидом. Количество капсомер и способ их укладки (рис. 52) строго постоянны для каждого вида вируса. Например, вирус полиомиелита содержит 32 капсомера, а аденовирус — 252 капсомера. Капсомеры могут быть уложены в виде многогранника с равномерными симметричными гранями — кубоидальная форма (например, аденовирус). Укладка в виде спиралей (сферическая) характерна для вирусов гриппа. Может быть тип симметрии, при котором нуклеиновая кислота имеет вид пружины, вокруг которой уложены капсомеры, в этом случае вирус имеет палочковидную форму — вирус, вызывающий болезнь листьев табака.


Рис. 52. Схематическое изображение расположения капсомеров в капсиде вирусов. а — вирус гриппа; б — аденовирус; в — вирус герпеса; г — вирус полиомиелита

Сложный тип симметрии имеет фаг: головка — кубоидальной, а отросток — палочковидной формы (сперматозоидная форма) (см. рис. 21, 22).

Таким образом, в зависимости от способа укладки вирусы подразделяют на кубоидальную, сферическую, палочковидную и сперматозоидную формы.

Некоторые вирусы, обладающие более сложной структурой, имеют оболочку, которая называется пеплос. Она образуется при выходе вируса из клетки хозяина. Вирусный капсид при этом обволакивается внутренней поверхностью цитоплазматической мембраны клетки хозяина и образуется один или несколько слоев оболочки суперкапсид. Такую оболочку имеют только некоторые вирусы, например вирусы бешенства, герпеса, энцефалита. Эта оболочка содержит фосфолипиды, разрушающиеся под воздействием эфира. Таким образом, воздействуя эфиром, можно отличить вирус, имеющий пеплос, от вируса с «голым капсидом».

У некоторых вирусов из внешнего липидного слоя оболочки выступают капсомеры в виде шипов (эти шипы тупые). Такие вирусы называются пепломерами (например, вирус гриппа, см. рис. 52).

Нуклеиновая кислота вируса является носителем наследственных свойств, а капсид и внешняя оболочка несут защитные функции, как бы оберегая нуклеиновую кислоту. Кроме того, они способствуют проникновению вируса в клетку.

Размеры вирусов. Измеряются вирусы в нанометрах. Величина их колеблется в широком диапазоне от 15-20 до 350-400 нм.

Методы измерения вирусов: 1) фильтрование через бактериальные фильтры с известной величиной пор; 2) ультрацентрифугирование — крупные вирусы осаждаются быстрее; 3) фотографирование вирусов в электронном микроскопе.

Химический состав вирусов. Количество и содержание ДНК и РНК вирусов неодинаковы. У ДНК молекулярная масса колеблется от 1·10 6 до 1,6·10 8 , а у РНК — от 2·10 6 до 9,0·10 6 .

Белки у вирионов обнаружены в незначительном числе, они состоят из 16-20 аминокислот. Кроме капсидных белков, имеются еще внутренние белки, связанные с нуклеиновой кислотой. Белки обусловливают антигенные свойства вирусов, а также в силу плотной укладки полипептидных цепей ограждают вирус от действия ферментов клетки хозяина.

Липиды и углеводы обнаружены во внешней оболочке сложных вирионов. Источником липидов и углеводов является оболочка клетки хозяина. Полисахариды, входящие в состав некоторых вирусов, обусловливают способность их вызывать агглютинацию эритроцитов.

Ферменты вирусов. Вирусы не имеют собственного метаболизма, поэтому они не нуждаются в ферментах обмена веществ. Однако у некоторых вирусов выявлено наличие ферментов, способствующих проникновению их в клетку хозяина. Например, у вируса гриппа А обнаружена нейраминидаза, отщепляющая нейраминовую кислоту, содержащуюся в оболочках животных клеток (эритроцитов и др.). У фагов — лизоцим, разрушающий клеточную оболочку, фосфатаза и др.

Выявление вирусных антигенов. Вирусные антигены в инфицированных клетках хозяина можно обнаружить с помощью метода иммунофлюоресценции. Препараты, содержащие клетки, инфицированные вирусами, обрабатывают специфическими иммунными люминесцирующими сыворотками. При просмотре в люминесцентном микроскопе в местах скопления вирусных частиц наблюдается характерное свечение. Вид вируса определяют по соответствию специфической люминесцирующей сыворотки, вызвавшей свечение.

Внедрение вируса в клетку, взаимодействие его с клеткой хозяина и репродукция (размножение) слагаются из ряда последовательных стадий.

Стадия 1. Начинается с процесса адсорбции за счет рецепторов вириона и клетки. У сложных вирионов рецепторы располагаются на поверхности оболочки в виде шиловидных выростов (вирус гриппа), у простых вирионов — на поверхности капсида.

Стадия 2. Проникновение вируса в клетку хозяина протекает по-разному у разных вирусов. Например, некоторые фаги протыкают оболочку своим отростком и впрыскивают нуклеиновую кислоту в клетку хозяина (см. главу 8). Другие вирусы попадают в клетку путем втягивания вирусной частицы с помощью вакуоли, т. е. на месте внедрения в оболочке клетки образуется углубление, затем края ее смыкаются и вирус оказывается в клетке. Такое втягивание называется виропексис.

Стадия 3. «Раздевание вируса» (дезинтеграция). Для своего воспроизведения вирусная нуклеиновая кислота освобождается от защищающих ее белковых покровов (оболочки и капсида). Процесс раздевания может начаться во время адсорбции, а может произойти тогда, когда вирус находится уже внутри клетки.

Стадия 4. На этой стадии происходит репликация (воспроизведение) нуклеиновых кислот и синтез вирусных белков. Эта стадия происходит при участии ДНК или РНК клетки хозяина.

Стадия 5. Сборка вириона. Этот процесс обеспечивается самосборкой белковых частиц вокруг вирусной нуклеиновой кислоты. Синтез белка может начаться непосредственно после синтеза вирусной нуклеиновой кислоты либо после интервала в несколько минут или несколько часов. У одних вирусов самосборка происходит в цитоплазме. У других в ядре клетки хозяина. Образование внешней оболочки (пеплоса) всегда происходит в цитоплазме.

Стадия 6. Выход вириона из клетки хозяина происходит путем просачивания вируса через оболочку клетки либо через отверстие, образовавшееся в клетке хозяина (в этом случае клетка хозяина погибает).

Типы взаимодействия вируса и клетки. Первый тип — продуктивная инфекция — характеризуется образованием новых вирионов в клетке хозяина.

Второй тип — абортивная инфекция заключается в том, что обрывается репликация нуклеиновой кислоты.

Третий тип — характеризуется встраиванием вирусной нуклеиновой кислоты в ДНК клетки хозяина; возникает форма сосуществования вируса и клетки хозяина (вирогения). В этом случае обеспечивается синхронность репликации вирусной и клеточной ДНК. У фагов это называется лизогения.

Микроскопическое исследование. При отдельных вирусных инфекциях в цитоплазме или ядрах клеток организма хозяина наблюдаются специфические внутриклеточные тельца — включения, имеющие диагностическое значение (тельца Бабеша — Негри при бешенстве, тельца Гварниери при оспе и др.). Размеры вирусных частиц и телец-включений удается искусственно увеличить специальными методами обработки препаратов с протравой и импрегнацией (например, метод серебрения по Морозову) и наблюдать при иммерсионной микроскопии. Более мелкие вирионы, лежащие за пределами видимости оптического микроскопа, обнаруживаются только при электронной микроскопии. Существуют разные точки зрения в отношении внутриклеточных включений. Одни авторы считают, что они представляют собой скопление вирусов. Другие считают, что они возникают в результате реакции клетки на внедрение вирусов.

Генетика вирусов. Модификация (ненаследуемые изменения) у вирусов обусловливается особенностями клетки хозяина, в которой происходит репродукция вируса. Модифицированные вирусы приобретают способность заражать клетки, аналогичные тем, в которых они модифицировались. У разных вирусов модификация по-разному проявляется. Например, у фагов изменяется форма «негативных пятен» (фаговых колоний).

Мутация — у вирусов возникает под влиянием тех же мутагенов, которые вызывают мутацию у бактерий (физические и химические факторы). Возникает мутация во время репликации нуклеиновых кислот. Мутации затрагивают различные свойства вирусов, например чувствительность к температуре и др.

Генетическая рекомбинация у вирусов может возникнуть в результате одновременного заражения клетки хозяина двумя вирусами, при этом может произойти обмен отдельными генами между двумя вирусами и образуются рекомбинанты, содержащие гены двух родителей.

Генетическая реактивация генов иногда происходит при скрещивании инактивированного вируса с полноценным, что приводит к спасению инактивированного вируса.

Спонтанная и направленная генетика вирусов имеет большое значение в развитии инфекционного процесса.

Устойчивость к факторам окружающей среды. Большинство вирусов инактивируется при действии высоких температур. Однако имеются исключения, например вирус гепатита термоустойчив.

К низким температурам вирусы не чувствительны, ультрафиолетовые солнечные лучи оказывают инактивирующее действие на вирусы. Рассеянный солнечный свет действует на них менее активно. Вирусы устойчивы к глицерину, что дает возможность длительно сохранять их в глицерине. Они устойчивы к антибиотикам (при культивировании вирусов исследуемый материал обрабатывают антибиотиками для подавления бактериальной флоры).

Кислоты, щелочи, дезинфицирующие вещества инактивируют вирусы. Однако некоторые вирусы, инактивированные формалином, сохраняют иммуногенные свойства, что позволяет использовать формалин для получения вакцин (вакцина против бешенства).

Восприимчивость животных. Круг восприимчивых животных для некоторых вирусов очень широк, например к вирусам бешенства чувствительны многие животные. Некоторые вирусы поражают только один вид животного, например вирус чумы собак поражает только собак. Имеются вирусы, к которым животные не чувствительны — например, вирус кори и т. д.

Органотропность вирусов. Вирусы обладают способностью поражать определенные органы, ткани и системы. Например, вирус бешенства поражает нервную систему. Вирус оспы обладает дермотропностью и т. д.

Выделение вирусов в окружающую среду. Из больного организма вирусы могут выделяться с калом, например вирус полиомиелита и другие энтеровирусы. Вирус бешенства выделяется со слюной, вирус гриппа — с отделяемым слизистой носоглотки и т. д.

Основные пути передачи вирусов. Воздушно-капельный (грипп, оспа), пищевой (полиомиелит, гепатит А), контактно-бытовой (бешенство), трансмиссивный (энцефалит).

Противовирусный иммунитет. Организм человека обладает врожденной устойчивостью к некоторым вирусам. Например, человек не чувствителен к вирусу чумы собак. Животные не чувствительны к вирусу кори. В этих случаях противовирусный иммунитет основан на отсутствии клеток, способных поддерживать репродукцию вирусов.

Противовирусный иммунитет обусловливается как клеточными, так и гуморальными факторами защиты, неспецифическими и специфическими. Неспецифические факторы. Мощным ингибитором репродукции вирусов является белковое вещество — интерферон. В здоровом организме он содержится в незначительном количестве, а вирусы способствуют продукции интерферона и количество его значительно увеличивается. Он неспецифичен, так как блокирует репродукцию разных вирусов. Однако он обладает тканевой специфичностью, т. е. клетки разных тканей образуют неодинаковый интерферон. Считают, что механизм действия его заключается в том, что он препятствует синтезу белка в клетке хозяина и этим прекращает репродукцию вируса.

К специфическим факторам противовирусного иммунитета относятся вируснейтрализующие антитела, гемагглютинирующие и преципитирующие.

Методы культивирования вирусов. Вирусы размножаются только в жизнеспособных клетках. Их культивируют: в куриных эмбрионах (рис. 53), культурах ткани человека и различных животных, в организме чувствительных животных, восприимчивых членистоногих.


Рис. 53, Куриный эмбрион. 1 — хорион-аллантоис: 2 — аллантоисная полость; 3 — амниотическая полость; 4 — желточный мешок; 5 — воздушный мешок; 6 — подскорлупная оболочка

В первый период развития вирусологии основным методом изучения вирусов являлось искусственное заражение животных, но этот метод сложный, и кроме этого животные ко многим вирусам оказались невосприимчивы.

Большое значение в развитии вирусологии имело введение методов культивирования вирусов в куриных эмбрионах и в культуре клеток тканей человека и животных.

Заражение куриных эмбрионов. Для репродукции вирусов используют куриные эмбрионы 7-12-дневного возраста, инкубированные в термостате при 37° С. Необходимым условием для правильного развития зародыша является соблюдение определенной влажности воздуха, которую можно создать, поместив в термостат сосуд с водой.

Пригодность куриного эмбриона для заражения определяется по наличию движений эмбриона и развитой сети кровеносных сосудов на хорион-аллантоисной оболочке при просвечивании с помощью овоскопа.

Культивирование вирусов в куриных эмбрионах проводится в разных местах эмбриона, который заражают (см. рис. 53):

1) на хорион-аллантоисную оболочку,

3) в амниотическую полость;

Заражение куриных эмбрионов проводят в боксе с использованием стерильных инструментов. Перед заражением куриные эмбрионы двукратно протирают ватным тампоном, смоченным спиртом.

Заражение на хорион-аллантоисную оболочку. После дезинфекции яйца осторожно срезают кусочек скорлупы с тупого конца, снимают подскорлупную оболочку — при этом обнаруживается хорион-аллантоисная оболочка. Инфекционный материал в количестве 0,1-0,2 мл при помощи шприца или пастеровской пипетки наносят на хорион-аллантоисную оболочку. После заражения отверстие закрывают колпачком и просвет между ним и куриным эмбрионом заливают парафином.

На другой стороне яйца простым карандашом пишут название инфекционного материала и дату заражения.

Заражение в амниотическую полость. Яйцо овоскопируют и на боковой стороне выбирают участок, где хорион-аллантоис лишен крупных кровеносных сосудов. Этот участок отмечают карандашом. Яйца укладывают на подставку в горизонтальном положении, дезинфицируют и специальным стерильным копьем прокалывают отверстие в скорлупе на глубину 213 мм, через которое вводят на это же расстояние иглу с инфекционным материалом непосредственно в амниотическую полость. Для того чтобы вводимая жидкость не вытекала обратно, предварительно делают прокол над воздушным мешком, после чего оба отверстия заливают парафином.

Заражение в аллантоисную полость. Заражение проводят в затемненном боксе. Отмечают воздушное пространство, скорлупу над воздушным пространством дезинфицируют и через отверстие в скорлупе вводят по направлению к эмбриону иглу шприца с материалом. Если игла попала в аллантоисную полость, то наблюдается смещение тени эмбриона. После заражения отверстие заливают парафином.

Заражение в желточный мешок. Скорлупу дезинфицируют. Яйцо помещают на подставку тупым концом вправо так, чтобы желточный мешок был обращен вверх. Над воздушной камерой в центре прокалывают отверстие. Через отверстие в скорлупе в горизонтальном направлении на глубину 2-3 мм вводят иглу шприца, которая попадает в желточный мешок. Материал вводят в объеме 0,2-0,3 мл. После введения материала отверстие парафинируют.

Температурный режим и длительность инкубации зависят от биологических свойств введенного вируса.

Инфицированные яйца ежедневно проверяют — овоскопируют для проверки жизнеспособности эмбриона. Если эмбрионы погибают в первые сутки, то причиной этого обычно бывает травма при заражении. Такие яйца выводят из опыта.

При необходимости раздельно исследовать каждую составную часть эмбриона материал собирают в определенном порядке: отсасывают аллантоисную жидкость, затем амниотическую жидкость, разрезают хорион-аллантоисную оболочку, отделяют амниотическую оболочку, эмбрион, желточный мешок и только после этого извлекают хорион-аллантоисную оболочку, отделив ее от внутренней поверхности скорлупы. Наличие вируса в зараженном эмбрионе определяют по характерным изменениям хорион-аллантоисной оболочки зараженного куриного эмбриона.

Вирусы, не обладающие гемагглютинирующей активностью, выявляют с помощью РСК.

Для выявления вируса в аллантоисной или амниотических жидкостях зараженных эмбрионов ставят РГА (гемагглютинация вызывается аллантоисной или амниотическими жидкостями или взвесью, приготовленной из хорион-аллантоисной оболочки).

Культивирование вирусов в культуре клеток. Для накопления вирусов в чувстсительных клеточных культурах используются ткани человека и различных животных. Наибольшее практическое применение получили однослойные культуры первично-трипсинизированных и перевиваемых линий клеток.

Однослойные культуры клеток выращивают в стеклянных плоских сосудах-матрацах. Клеточная суспензия в жидкой питательной среде при температуре 37° С позволяет получить «in vitro» слой клеток с определенной гистологической структурой. Присутствие вирусов в культурах тканей обнаруживают по изменению (дегенерации) клеток. Тип вирусов определяют путем нейтрализации действия вирусов при добавлении к вируссодержащему материалу соответствующих типоспецифических сывороток.

Эти методы позволяют быстрее учитывать результаты исследования и являются более экономичными. В тех случаях, когда вирусы не вызывают цитопатического действия (дегенерации) и не развиваются в куриных эмбрионах, пользуются методами заражения животных (см. главу 11).

Для культивирования вирусов используют перевиваемые клетки, которые чаще получают из клеток злокачественных опухолей.

Однослойные культуры получают из эмбрионов человека, курицы, животных.

Преимущество однослойных культур клеток — простота методики и легкость учета.

Способность клеток к размножению вне организма связана со степенью дифференциации ткани. Менее дифференцированные ткани обладают большей способностью к пролиферации (соединительная, эпителиальная ткань).

Сущность методов при приготовлении первичных культур ткани заключается в разрушении межклеточной ткани и разобщении клеток для последующего получения монослоя.

Разобщение клеток проводится путем воздействия на ткань протеолитических ферментов, чаще всего трипсина. Раствор трипсина способствует разъединению клеток при сохранении у них способности к размножению. Для выращивания культуры клеток необходима питательная среда. Состав среды сложный, он включает целый ряд ингредиентов: аминокислоты, глюкозу, витамины, минеральные соли, коферменты и т. д. Получение культуры ткани проводят в строго асептических условиях. В среду добавляются антибиотики (500 ЕД пенициллина и 250 ЕД стрептомицина в 1 мл) для подавления роста бактериальной флоры.

Подготовленную ткань заливают 0,25% раствором подогретого трипсина и инкубируют в термостате при 37° С. Во время инкубации ткань периодически помешивают путем вращения колбы. Трипсинизированные клетки центрифугируют при 800-1000 об/мин в течение 5 мин.

Трипсинизацию и центрифугирование проводят очень осторожно, чтобы не травмировать клетки. После центрифугирования надосадочную жидкость удаляют, а осадок клеток помещают в небольшой объем питательной среды. Для получения однородной массы взвесь клеток фильтруют через один слой марли в воронке (стерильной). Взвесь клеток проверяют на стерильность путем посева по 0,1 мл , в 2 пробирки с сахарным бульоном.

Успех культивирования клеток зависит от посевной Дозы, поэтому после трипсинизации производят подсчет клеток в камере Горяева. После подсчета взвесь клеток разводят питательной средой из такого расчета, чтобы в 1 мл содержалось 500000-1000000 клеток и разливают по пробиркам и матрацам. Пробирки с культурой ткани инкубируют в термостате в наклонном положении.

Посеянные культуры ежедневно просматривают под малым увеличением микроскопа для определения характера их роста. Нормальные пролиферирующие клетки светлые и растут однослойным пластом. Если клетки темные, зернистые и не пролиферируют, что может быть результатом загрязнения (плохая обработка посуды или загрязнение ингредиентов), то такие культуры изымают из опыта.

Смена питательной среды через 2-3 дня после посева улучшает интенсивность пролиферации.

Нормальные, хорошо пролиферирующие клетки заражают исследуемым материалом.

Перевиваемые культуры преимущественно получают из злокачественных опухолей. Штамм Hela — культура клеток рака шейки матки женщины по имени Helena (получен в 1950 г.); штамм Нер-2 выделен от больного раком гортани. Рост этих клеток поддерживается в лабораториях путем последовательных пассажей. Особенность их заключается в том, что они размножаются в течение длительного срока. В настоящее время эти клетки прошли уже тысячи генераций. В процессе пассажей они теряют некоторые морфологические и биохимические свойства — подвергаются мутации. Однако остаются вполне пригодными для культивирования в них вирусов. Культурой этих клеток пользуются лаборатории всего мира.

Размножение вируса в культуре клеток происходит в различные сроки в зависимости от свойств вируса и вида клеток.

О наличии вируса судят по цитопатическому действию. В микроскопе наблюдается дегенерация клеток. Время цитопатического действия и его характер зависят от дозы и свойств вируса.

У некоторых вирусов цитопатическое действие обнаруживается через несколько дней (вирус оспы), у других — через 1-2 нед (вирус гепатита и др.).

В настоящее время известны уже сотни вирусов, поражающих человека. Борьба с вирусными инфекциями осуществляется разными методами. Наиболее эффективна иммунизация. Таким способом ликвидирована оспа, сокращена заболеваемость полиомиелитом. Важное значение в борьбе с вирусными инфекциями имеют общественная профилактика — уничтожение бродячих собак (борьба с бешенством), личная профилактика и т. д.

Однако эти меры не могут обеспечить ликвидацию всех вирусных заболеваний. Ученые настойчиво ищут пути, при помощи которых можно было бы поразить вирус, не повредив клетку, в которой он находится.

Поэтому закономерно, что в программе КПСС вирусология названа одной из ведущих отраслей естественнонаучных знаний, которая должна получить преимущественное развитие в ближайшие годы.

Основные методы исследования вирусов. 1. Реакция гемагглютинации, реакция задержки гемагглютинации, реакция непрямой гемагглютинации. Реакция связывания комплемента.

2. Реакция нейтрализации вирусов в культуре тканей.

3. Метод иммунофлюоресценции.

4. Гистологический метод — выявление включений (телец Бабеша — Негри — при бешенстве; телец Пашена — при оспе и др.).

источник

В 1951—1953 годах их обнаружили у больных полиомиелито-подобными заболеваниями. Комитетом по номенклатуре виру­сов было признано целесообразным сохранить название ЕСНО. В настоящее время известно более 30 серотипов этих вирусов, хотя не все они могут вызывать заболевания у людей. Вирусы не­патогенны для лабораторных животных.

Читайте также:  Есть ли бешенство в израиле

Структура.Вирионы имеют строение, характерное для пред­ставителей семейства Рicjrnaviridae: кубический тип симметрии (икосаэдр) капсид, содержащий 32 капсомера. Диаметр вириона 20—30 нм. Нуклеиновая кислота представлена РНК.

Резистентность.ЕСНО-вирусы, как и большинство энтеровирусов, эфиро- и спирторезистентны, антибиотикоустойчивы. В фекалиях и канализационных водах при 0°С сохраняют био­логическую активность в течение нескольких недель. При 20°С в культуральной жидкости сохраняются годами. Инактивируются в течение нескольких минут при 100° С, через 30 минут — при 50°С. Инактивирующее действие на вирус оказывают хлорсодержащие дезинфектанты и формалин.

Культивирование.Большинство серотипов ЕСНО-вирусов раз­множаются в клетках Нер-2, Не1а, КВ, культурах клеток из чело­веческого амниона, обычно вызывая выраженное ЦПД. В кури­ных эмбрионах не репродуцируются.

Эпидемиология.Источником инфекции является больной че­ловек или вирусоноситель. Циркуляция вируса среди населения довольно распространена. Восприимчивость к нему высокая и за­болевания регистрируются среди различных групп населения, но самый высокий процент заболеваемости у детей до 10 лет.

У взрослых восприимчивость повышается при беременности или после лечения кортикостероидами. Механизмы заражения фекально-оральный, реже воздушно-капельный.

Патогенез и клиника.Патогенез подобен тому, который на­блюдается при инфицировании вирусами Коксаки. Вирусы ЕСНО обнаруживаются через две недели после инфицирования в крови, слизи из зева и фекалиях. Являются возбудителями серозных ме­нингитов (серотипы 1—7, 9, 11—23, 25, 27, 30, 31), полиомиелитоподобных заболеваний (серотипы 1—4, 6, 7, 9, 11, 13, 14, 16, 18, 30, 31), а также гастроэнтеритов, диареи, заболеваний верхних дыхательных путей, энцефалитов, перикардитов.

Лабораторная диагностика.Тип вируса определяется в РН и РТГА.

Иммунитет.Типоспецифический. Специфическая терапия не разработана. Можно использовать человеческий иммуноглобулин, серии которого имеют антитела практически ко всем типам вируса.

Профилактика.Профилактические мероприятия аналогичны тем, которые проводят в очагах Коксаки-инфекции.

Бешенство — особо опасное остро протекающее заболе­вание, передающееся через слюну от больных млекопитающих чело­веку; характеризуется поражением ЦНС с летальным исходом.

Инфекционную природу бешенства установили в начале XIX века, вирусную этиологию определил в 1903 году П. Ремленже. Возбудитель бешенства — вирус Nеuroryetesrabiesпринадле­жит к родуLissavirus, семейству Rabdoviridae.

Морфология.Вирионы имеют пулевидную форму — один конец закругленный, другой — плоский, диаметр — 75—80 нм, длина — 180 нм. Геном представлен одноцепочечной РНК с моле­кулярной массой (4—5)×10 6 . Было показано, что депротеинизированная геномная РНК неинфекционна. Это отражает тот факт, что вирусная РНК имеет негативную полярность (то есть компле­ментарна м-РНК), поэтому для синтеза м-РНК вирус, заражаю­щий клетку, должен содержать вирус-специфическую РНК-зави­симую РНК-полимеразу. Геномная РНК инкапсидируется по всей длине единственным главным структурным белком. Процесс инкапсидирования завершается формированием спирального нуклеокапсида, который в свернутом состоянии определяет форму зрелого вириона.

Белки с активностью РНК-зависимой РНК-полимеразы (тран-скриптазы) присоединяются к нуклеокапсиду и образуют рибо-нуклеопротеид (РНП). При введении в клетку он проявляет ин-фекционность. У зрелых вирионов рибонуклеопротеид окружен оболочкой, состоящей из липидного бислоя с гликопротеиновыми выступами. Хотя оболочка не является необходимой для зара­жения, она повышает инфекционность вируса на три — пять по­рядков.

Антигеиная структура.Вирус бешенства содержит гликопро-теидный антиген вирусной оболочки и внутренний нуклеопротеидный антиген. Первый из них способен индуцировать образова­ние вируснейтрализующих антител и защищать от заражения. Нуклеопротеидный антиген индуцирует образование комплемент — связывающих и преципитирующих антител, которые не имеют вируснейтрализующей активности. Вирус обладает гемадсорбирующими свойствами. Реакция гемадсорбции происходит в присут­ствии эритроцитов гусей, кур, хомяков, морских свинок.

Резистентность.Устойчивость вируса бешенства невелика. Инактивация в 1—5 %-ном растворе формалина наступает в тече­ние 5 минут, в 0,1 %-ном растворе сулемы — за 2—3 часа, 1 %-ном растворе фенола — за две-три недели, 2 %-ном — за 24 часа, 5 %-ном — за 5—10 минут; 1 %-ный раствор перманганата калия убивает вирус за 20 минут, 3-5 %-ный соляной кислоты — за 5 ми­нут, 10 %-ный йода — за 5 минут. Вирус чувствителен к щелоч­ным растворам: под их воздействием происходит деструкция его липопротеиновой оболочки. Эта особенность имеет важное зна­чение, так как промывание раны укушенного слабым раствором щелочи или мыльным раствором способствует инактивации виру­са. В то же время низкие температуры консервируют вирус. Так, вируссодержащая суспензия в 0,1 %-ном сывороточном альбуми­не при нейтральном рН стабильна в течение нескольких лет при температуре минус 70°С или в лиофилизированном состоянии. Высушивание без вакуума инактивирует вирус через 10—14 дней. При температуре 23 °С вирус сохраняется в течение 28-53 дней, при 50°С инактивируется через час, 60 °С — за 5—10 минут, 70 °С — мгновенно.

Культивирование.Вирус бешенства можно культивировать на мышах, кроликах, морских свинках при интрацеребральном ме­тоде заражения. После предварительной адаптации к вирусу вос­приимчивы куриные эмбрионы. Размножается он в первичных культурах клеток почки сирийского хомячка, эмбриона овец, те­лят, куриных фибробластов, слюнных желез собак, а также в пе­ревиваемых клеточных культурах ВНК-21, кроличьего эндотелия, почек эмбриона свиньи и некоторых других. Почти все типы куль­тивируемых клеток — как первичные, так и перевиваемые, чув­ствительны к вирусу бешенства.

Первые удачные попытки по изменению биологических свойств вируса были проведены Л. Пастером с сотрудниками Ш. Шамберланом и Э. Ру (1882-1885). После 178-го интрацеребрального пассажа уличного вируса бешенства на кроликах вирус вызывал у них заболевание с гибелью на шестой день. Рабический вирус, вызывающий у кроликов бешенство после короткого инкубационного периода с постоянным фиксированным сроком, Л. Пастер назвал фиксированным вирусом (virusfixe), в отличие

от первоначального неизмененного, названного уличным (virusdesrues). Фиксированный вирус использовался для вакцинации круп­ного рогатого скота, кошек, собак.

Эпидемиология.Бешенство — это типичный зооантропоноз. Источником болезни и переносчиком вируса чаще всего являют­ся домашние и дикие животные, в частности представители сле­дующих семейств отряда хищников: собачьи — собака, волк, ли­сица, енотовидная собака, шакал, дикая собака; кошачьи — кошка домашная и дикая, рысь, пантера, леопард и др.; енотовые — енот-полоскун и др.; куньи — куница лесная и каменная, хорек, ласка, горностай и др.; виверровые — мангуст; гиеновые; медвежьи. Установлено, что летучие мыши-вампиры, являясь резервуаром и переносчиком вируса бешенства в природе, заражают животных и людей. В США отмечено пять случаев заболевания людей после укусов их насекомоядными летучими мышами.

Животное обычно заражается путем укуса больного животно­го и после длительного инкубационного периода заболевает. Бо­лезнь может развиваться в форме паралича, но чаще проявляется в виде буйного бешенства, при котором затронута лимбическая система мозга, и животное в припадке ярости, гонимое лимбическим возбуждением, кусает всех без разбора. В слюне животного вирус присутствует в высокой концентрации и легко передается с укусами.

У людей обычно бывает паралитическая форма болезни, не связанная с агрессивностью, в связи с чем болезнь протекает как тупиковая инфекция.

Таким образом, бешенство передается через укус со слю­ной больного животного или во время ослюнения при наличии повреждений кожного покрова. Кроме того, имеются сообще­ния о передаче вируса с молоком, мочой, через конъюнктиву гла­за, аэрогенным и энтерогенным путями.

Данные почти столетнего периода изучения бешенства свиде­тельствуют о том, что до 1955 года в большинстве стран основным источником заражения (80-90 % случаев) были собаки и в 0,2-4 % случаев — кошки. В 60—80-е годы нашего столетия в результате проведения массовой вакцинации собак против бешенства и воз­никновения в ряде стран Европы и Северной Америки эпизоотии бешенства среди диких плотоядных (лисиц, куниц и т. д.) роль отдельных источников возбудителя бешенства для человека изме­нилась.

В Украине в период с 1965 по 1980 год преобладающими ис­точниками заражения (58,9 %) были лисы, енотовидные собаки, барсуки, куницы. Возрос удельный вес кошек (30 %), экологичес­ки связанных с лисицами. В то же время в большинстве стран Латинской Америки, Азии и Африки собака остается основным источником заражения человека.

Вопрос о роли грызунов как источников бешенства для чело­века окончательно не решен. Вирус бешенства выделен от мелких грызунов в США, Германии, Таиланде, однако в настоящее время не рекомендуют проводить антирабическое лечение лиц, укушен­ных грызунами.

Патогенез и клиника.Причины симптомов бешенства и гибе­ли от него изучены недостаточно. По данным югославских уче­ных, вирус бешенства не размножается в организме до тех пор, пока не попадет в центральную нервную систему. Достигнув ее, он вызывает в ней необратимые изменения. Они наступают рань­ше, чем в организме успевает сформироваться активный иммуни­тет. Непосредственно после инфицирования возбудитель можно нейтрализовать специфическим иммуноглобулином.

Патогенез бешенства зависит от ряда факторов: вирулентнос­ти возбудителя, устойчивости организма животного, времени про­движения возбудителя до ЦНС. Случаи спонтанного выздоровле­ния собак после искусственного заражения вирусом бешенства диких животных предполагают наличие у отдельных особей высо­кой степени защиты, то есть высоких титров гуморальных вируснейтрализующих антител.

Как было сказано выше, вирус бешенства попадает в орга­низм человека через рану или микроповреждение кожи при укусе или ослюнении его бешеным животным. Реже входными ворота­ми инфекции являются слизистые оболочки. Далее наблюдается центростремительное движение вируса по периневральным про­странствам со скоростью 1 мм/ч. Дальнейшее размножение и на­копление его происходит в основном в головном и спинном мозге с последующим центробежным распространением и поражением всей нервной системы, в том числе нервных узлов слюнных же­лез. Из слюнных желез вирусы выделяются в окружающую среду.

В течении болезни различают следующие стадии: продромальную, развившейся болезни с возбуждением, параличей, заканчи­вающуюся летальным исходом. Продолжительность инкубацион­ного периода в известной степени зависит от локализации укуса (короткий — при укусах в лицо, голову, более длинный — при укусах в стопы), степени его тяжести, возраста укушенного. Ин­кубационный период чаще всего составляет от 10 до 30—40 дней, реже — до одного года и более.

Первые признаки болезни обнаруживаются почти всегда в месте укуса. Больные начинают ощущать зуд, тянущие и ноющие не­вралгические боли по ходу нервных путей, ближайших к месту укуса. Отмечается субфебрильное повышение температуры, об­щее недомогание, головная боль, симптомокомплекс тревоги. Продромальные явления усиливаются, наблюдается тошнота, уси­ливается потливость. Внезапно под влиянием какого-либо раз­дражения возникают пароксизмы гидро-, аэро-, фото-, акустико-

фобии. Приступ сопровождается болезненными спазмами мышц глотки. Вдох сильно затруднен, выдох поверхностный. Нарастает тахикардия, больные мечутся, возбуждены, умоляют о помощи, появляются галлюцинации. Когда возбуждение проходит, насту­пает стадия параличей или «зловещего успокоения». Часто разви­тие параличей начинается с нижних конечностей и идет по типу восходящего паралича Ландри. В этом периоде может исчезнуть аэро- и гидрофобия. Смерть наступает от паралича дыхательного или сосудодвигательного центра. По данным М. А. Селимова, примерно у 80 % больных заболевание длилось от трех до семи дней. Появившиеся сообщения I. Jillostonи соавторов об излече­нии больных от бешенства недостаточно убедительны.

Лабораторная диагностика.Для лабораторной диагностики бешенства во всех странах применяютиммунофлюоресцентныйана­лиз, гистопатологические исследования головного мозга и био­пробу на кроликах или белых мышах.

Наиболее достоверными методами исследования мозга умер­шего является биопробапри интрацеребральном заражении лабо­раторных животных суспензией мозга и метод иммунофлюоресценции, заключающийся в обработке мазков-отпечатков мозга антирабическим флюоресцирующим гамма-глобулином для вы­явления вирусного антигена. Метод иммунофлюоресценции срав­нительно экономичен и быстро воспроизводится: ответ получают в течение одного дня.

Гистопатологическиеисследования головного мозга основаны на выявлении телец Бабеша — Негри в цитоплазме больших нерв­ных клеток аммонова рога, клеток коры головного мозга и мозжеч­ка. Этот метод применяется довольно редко ввиду того, что в оча­гах природного типа циркулируют штаммы вируса, обладающие слабой негригенной активностью. Кроме того, новыми перспек­тивными методами лабораторной диагностики являются методантирабических моноклональных антителииммунофлюоресцентный анализ кожных проб еще при жизни животного.

Лечение.Специфическое лечение не разработано. Применя­ются симптоматические средства с целью уменьшения страданий больного, снижения возбудимости нервной системы, улучшения сердечно-сосудистой деятельности. Для питания и восстановле­ния потерь жидкости парентерально вводят солевые растворы, плазмозаменители, растворы глюкозы, витамины. Делают попытки лечения антирабическим иммуноглобулином в комплексе с реани­мационными мероприятиями. Пока, однако, эти меры не привели к успеху.

Профилактика.Мероприятия по борьбе с бешенством и его профилактике основаны на классический триаде — обезврежива­ние или уничтожение источника инфекции, недопущение меха­низма передачи и создание невосприимчивости.

При бешенстве, как и при большинстве зоонозов, искорене­ние источника инфекции, особенно у диких животных, практи­чески неосуществимо в силу экологических особенностей резер­вуара инфекции. Целью борьбы с эпизоотиями природного типа является поддержание численности животных, являющихся ре­зервуаром бешенства, на определенном уровне. Специалисты счи­тают, что плотность популяции, например, лисиц должна состав­лять 2-3 особи на 100 га.

В последнее время в США, Швейцарии, Канаде, Франции и Германии для профилактики бешенства диких животных используют оральную иммунизацию живой культуральной вакци­ной. Дозу вакцины в поливинилхлоридной упаковке помещают в куриные головки, которые раскладывают на местности. В тече­ние 48 часов поедается до 63 % приманок. При оральной иммуни­зации не отмечают вирусоносительства и выделения вируса в ок­ружающую среду.

Профилактика бешенства включает и комплекс мер по борь­бе с эпизоотиями бешенства городского типа: предупреждение бродяжничества собак и кошек, обязательная их регистрация, профилактическая иммунизация домашних животных.

Предупреждение заболевания человека после укуса или ослюнения его бешеным или неизвестным животным осуществля­ется путем тщательной первичной обработки раны мыльным рас­твором или раствором перманганата калия и прижиганием концентрированной (10 %-ной) настойкой йода.

Прививки при бешенстве в большинстве случаев, за исключе­нием вакцинации ветеринарных работников, лесников, персона­ла научно-исследовательских лабораторий, носят не профилакти­ческий, а лечебный характер и назначаются только при укусе бешеными или подозрительными на бешенство животными. При этом применяют три группы вакцин.

Мозговые, или нервно-тканевые, получаемые при внутримозговом заражении овец, кроликов, новорожденных белых крыс вакцинными штаммами вируса бешенства, инактивированные различными химическими веществами (фенол, эфир, формалин). У нас в стране применяется феноловая лиофилизированная антирабическая вакцина Ферми из мозга овец. Эти вакцины обладают значительной энцефалитогенностью, что приводит в отдельных случаях к развитию поствакцинальных осложнений.

В ряде стран применяются яичные живые антирабическиевак­цины. В нашей стране такие вакцины не производятся и не при­меняются.

Культуральные вакцины.Это концентрированная инактиви-рованная культуральная антирабическая вакцина (КОКАВ) и куль-туральная антирабическая вакцина (КАВ). Она в 12-52 раза им-муногеннее мозговой референс-вакцины. В настоящее время

изучается специфическая активность КОКАВ при использовании сокращенных схем прививок (двух трехкратная иммунизация плюс две бустер инъекции).

Кроме антирабической вакцины, при укусах дикими живот­ными назначается комбинированное лечение с применением антирабического гетерогенного (из сыворотки лошадей) иммуноглобулина в первый-второй день после укуса. Пассивное введение антител дает возможность удлинить инкубационный период бо­лезни, в течение которого при помощи вакцины создается напря­женный активный иммунитет. К недостатку антирабического иммуноглобулина относится довольно частое (15—20 % случаев) возникновение аллергических реакций разной степени тяжести. В настоящее время получен гомологический (из сыворотки чело­века) антирабический иммуноглобулин.

ВИРУС ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА

СПИД —синдром приобретенного иммунодефицита че­ловека — одна из важнейших и трагических проблем, возникших перед человечеством в конце XX века. Суть этой проблемы за­ключается не только в том, что в настоящее время в мире многие миллионы людей инфицированы, что СПИД — это тяжелейшая экономическая проблема, поскольку содержание и лечение забо­левших, разработка и производство диагностических и лечебных препаратов, проведение научных исследований уже сейчас стоят многие миллиарды, но и в том, что до сих пор нет радикального метода лечения и профилактики этой инфекции, вызывающей гибель больных в течение нескольких месяцев или лет.

Впервые СПИД как особое инфекционное заболевание, при­нявшее массовый характер, был зарегистрирован в 1981 году Цен­тром по контролю за болезнями в Атланте (штат Джорджия, США). «Еженедельный вестник заболеваемости и смертности», выходя­щий в этой стране, сообщил о необычных формах пневмонии, вызванной условно-патогенными простейшими Рneumocystisсаrinii(пневмоцистной пневмонии), и злокачественной опухоли — саркомы Капоши у молодых людей, что не было ранее характерно для данного возраста. Кроме того, было установлено, что у таких больных развиваются другие инфекции (оппортунистические), вызванные условно-патогенными и патогенными бактериями, вирусами, грибами, простейшими и гельминтами. Данные свиде­тельствовали, что неизвестный возбудитель приводит к наруше­нию системы защиты организма, в частности клеточного и других звеньев иммунитета, и с 1982 года на страницах научных, а затем и публицистических изданий все чаще стали появляться статьи об «AIDS» (Аcquiredimmunodeficiencysyndrom) или в русском пере­воде — о СПИДе.

С самого начала было обращено внимание на то, что забо­левшие СПИДом — люди с нетипичным сексуальным и соци­альным стилем жизни: гомосексуалисты, наркоманы. В даль­нейшем группа риска, подверженная инфицированию, была расширена: в нее включили страдающих гемофилией, а также детей, рожденных от больных СПИДом матерей. За короткое время были зарегистрированы десятки случаев СПИДа, который передавался от человека к человеку, быстро прогрессировал, при­водил к резкому ослаблению больных, присоединению сопут­ствующих инфекций и довольно быстрой гибели. Пути передачи заболевания указывали на его инфекционную природу, однако ни один из ранее изученных возбудителей не подходил с точки зрения распространения и характера поражений, вызываемых им в организме.

Поскольку иммунодефицитное состояние при СПИДе в ос­новном затрагивает клеточно-зависимый иммунитет, было предположено, что новый инфекционный агент является пато­генным для лимфоцитов, осуществляющих иммунные реакции, и проявляет к ним тропность (т. е. может в них размножаться). Такими свойствами обладали лишь некоторые представители осо­бого семейства РНК-содержащих вирусов — ретровирусы, давно известные у животных. В поиск возбудителя СПИДа включи­лись микробиологи, вирусологи, иммунологи, инфекционисты и в 1983—1984 годах были опубликованы данные о новом ретровирусе человека, вызывающем синдром приобретенного имму­нодефицита.

Приоритет в открытии возбудителя принадлежит двум груп­пам ученых, работавших независимо друг от друга: американс­ким вирусологам из Национального ракового института США под руководством профессора Роберта Галло и французским спе­циалистам из института Пастера в Париже, возглавляемым про­фессором Люком Монтанье. Ретровирус вначале было предло­жено назвать LAV (НТLV-Ш) от англ.Limphfdenopatyassociatedvirus(вирус, вызывающий лимфоаденопатию) иhumanТ-1уmphotropicvirus(вирус человека, обладающий тропизмом к Т-лимфоцитам), а в 1986 году по решению экспертов ВОЗ — НIV (от англ.Human immunodeficiency virus). В русской транскрипции — ВИЧ-1, или вирус иммунодефицита человека.

В настоящее время установлено существование нескольких разновидностей ВИЧ: НТLV-IY, LАV-2,SВL, АRVи др. Возбуди­тели СПИДа — типичные ретровирусы, относящиеся к семействуRеtrоviridае. Название семейства связано с наличием у вирусов фермента ревертазы (обратной транскриптазы), с помощью кото­рого с РНК-вируса в зараженных клетках синтезируется провирусная ДНК с последующим образованием провируса, интегри­рующегося в клеточный геном.

Семейство разделяется на три подсемейства: Опсоvirinae(он-ковирусы), Sрumavirinае («пенящие» вирусы),Lentivirinае («мед­ленные» вирусы). Большинство исследователей полагают, что ретровирусы ВИЧ принадлежат к подсемейству «медленных» вирусов, вызывающих заболевания с длительным инкубационным перио­дом, поражением мозга, суставов, крови, исхуданием и заканчи­вающихся смертью. Отличительной особенностью «медленных» вирусов является высокая степень генетической изменчивости, что особенно ярко выражено у ВИЧ.

Теории происхождения ВИЧ.Этот вопрос является весьма ос­трым. Высказано немало предположений по данному поводу: от занесения вируса из космоса, до его «утечки» из лаборатории во­енного ведомства США, где он был искусственно создан. Некото­рые авторы считают, что возбудитель СПИДа длительное время существовал в эндемичных регионах Центральной и Западной Африки, но глобальное распространение получил лишь в послед­ние годы в связи с интенсивными транспортными связями и со­путствующими социальными явлениями (гомосексуализм, нарко­мания, свободные половые отношения).

Большинство же исследователей утверждают, что СПИД — это новое заболевание человека, а возбудитель его эволюционно сформировался лишь в последние десятилетия. В данном случае принципиальное значение приобретает открытие ретровируса обезьян. Близкие между собой разновидности этого вируса (SТLV-Шmас. иSТLV-IIIаgm.) вызывают у макак и африканских зеле­ных мартышек процессы, напоминающие СПИД у человека. По­лагают, что вирусы обезьян, преодолев видовой барьер, явились генетическим началом для последующей эволюции ВИЧ. Лимфотропный вирус африканских зеленых мартышек широко рас­пространен. Антитела к нему обнаружены у 70 % особей популя­ции обезьян в Уганде. Учитывая бессимптомное течение и широкое распространение у животных данной инфекции, следует предпо­ложить, что она исторически сформировалась давно. Поскольку африканские зеленые мартышки являются синантропным видом и живут вблизи поселений человека, существовала высокая веро­ятность неоднократного инфицирования последних данным воз­будителем. С позиции межвидового перехода становится понят­ным, почему СПИД в настоящее время протекает тяжело и является летальным для людей.

Ш. Николь в 30-х годах сформулировал тезис о том, что стратегической позицией возбудителя является не гибель хозя­ина, а длительное сосуществование с ним, сохраняющее паразит как вид. В случае межвидового перехода пока еще не произошло взаимного приспособления и на первых этапах формирования его нередко наблюдается клинически тяжелое, порой губительное для хозяина течение болезни.

Выход возбудителя за границы эндемического очага или по­падание в очаг чувствительных контингентов приводит к разви­тию острой, манифестной инфекции. В связи с этим считают, что историческое формирование ВИЧ произошло среди определен­ных изолятов аборигенов некоторых районов Центральной Афри­ки, а при распространении возбудителя на новые континенты начался широкий эпидемический процесс. В целом проблема про­исхождения и эволюции возбудителя СПИДа еще далека от раз­решения.

Морфология и антигенная структура.Возбудитель ВИЧ-ин-фекции — сложный по строению и химическому составу вирус (см. вкл. VIII). Вирион имеет округлую форму, электронноплотную сердцевину (покрытую белковым капсидом) и внешнюю обо­лочку, состоящую из двойной липидной мембраны, которую вирус приобретает в клетке из ее компонентов. Описаны две морфоло­гические формы возбудителя: одна имеет диаметр частиц 120 нм и полиморфную сердцевину, вторая диаметром 90 нм и с цилин­дрической сердцевиной. Сердцевина ВИЧ не полностью запол­няет объем вириона, содержит две молекулы РНК, фермент ревертазу и пять видов белка. От внешней мембраны вируса отходят отростки диаметром 15 и высотой 9 нм, в состав которых входят гликопротеидыgр41 и gр120. В настоящее время расшифрована последовательность нуклеотидов вируса, изучена его генетичес­кая структура.

Антигениыми свойствамиобладают, вероятно, все вирусные белки и их клеточные предшественники. Особенно важную роль в биологии вируса и патогенезе инфекции играют гликопротеи­ды внешней оболочки. Они имеют защитную функцию, опреде­ляют инфекционность вируса, являются протективными антиге­нами, с ними в основном связан высокий уровень изменчивости ВИЧ и его иммунодепрессивное и цитолитическое действие.

Читайте также:  Случаи заболевания бешенством животных

Возбудитель СПИДа характеризуется очень высокой генети­ческой и, соответственно, антигенной вариабельностью. Скорость замены нуклеотидов в генах, кодирующих синтез гликопротеидов оболочки (gр41 и особенно gр120) и внутренних белков, вхо­дящих в состав сердцевины и капсулы, в сотни раз превышают соответствующий показатель других вирусов, даже наиболее из­менчивого из них — вируса гриппа. Несмотря на такой уровень трансформации у вариантов ВИЧ остаются общие антигенные детерминанты, так как почти у всех больных СПИДом выявля­ются антитела к белкам одного прототипного вируса.

источник

Вирусы [от лат. virus, яд] — наименьшие по размерам агенты, имеющие геном, окружённый белковой оболочкой. Вирусы не воспроизводятся самостоятельно, они — облигатные внутриклеточные паразиты, репродуцирующиеся только в живых клетках. Все вирусы существуют в двух формах. В настоящее время известны вирусы бактерий (бактериофаги), грибов, растений и животных.

Внеклеточная форма — вирион — включает в себя все составные элементы (капсид, нуклеиновую кислоту, структурные белки, ферменты и др.). Внутриклеточная форма — вирус — может быть представлена лишь одной молекулой нуклеиновой кислоты, так как, попадая в клетку, вирион распадается на составные элементы.

Несмотря на внутриклеточный паразитизм, среди вирусов имеются крупные виды, соизмеримые по размерам с микоплазмами и хламидиями. Например, вирус натуральной оспы достигает 400 нм и вполне сравним с риккетсиями (300-500 нм) и хламидиями (300-400 нм). По морфологии выделяют вирусы палочковидные (например, возбудитель лихорадки Эбола), пуле-видные (вирус бешенства), сферические (герпесвирусы), овальные (вирус оспы), а также бактериофаги, имеющие сложную форму (рис. 2-1). При всём разнообразии конфигураций, размеров и функциональных характеристик вирусам присущи некоторые общие признаки. В общем виде зрелая вирусная частица (вирион) состоит из нуклеиновой кислоты, белков и липидов, либо в его состав входят только нуклеиновые кислоты и белки.

Вирусы содержат только один тип нуклеиновой кислоты, ДИК или РНК, но не оба типа одновременно. Например, вирусы оспы, простого герпеса, Эпстайна-Барр — ДНК-содержащие, а тогавирусы, пикорнавирусы — РНК-содержащие. Геном вирусной частицы гаплоидный. Наиболее простой вирусный геном кодирует 3-4 белка, наиболее сложный — более 50 полипептидов. Нуклеиновые кислоты представлены однонитевыми молекулами РНК (исключая реовиру-сы, у которых геном образован двумя нитями РНК) или двухнитевыми молекулами ДНК (исключая парвовирусы, у которых геном образован одной нитью ДНК). У вируса гепатита В нити двухнитевой молекулы ДНК неодинаковы по длине.

Вирусные ДНК образуют циркулярные, ковалентно-сцёпленные суперспирализованные (например, у паповавирусов) или линейные двухнитевые структуры (например, у герпес- и аденовирусов). Их молекулярная масса в 10-100 раз меньше массы бактериальных ДНК. Транскрипция вирусной ДНК (синтез мРНК) осуществляется в ядре заражённой вирусом клетки. В вирусной ДНК на концах молекулы имеются прямые или инвертированные (развёрнутые на 180″) повторяющиеся нуклеотидные последовательности. Их наличие обеспечивает способность молекулы ДНК замыкаться в кольцо. Эти последовательности, присутствующие в одно- и двух-нитевых молекулах ДНК, — своеобразные маркёры вирусной ДНК.

Рис. 2-1. Размеры и морфология основных возбудителей вирусных инфекций человека.

Вирусные РНК представлены одно- или двухнитевыми молекулами. Однонитевые молекулы могут быть сегментированными — от 2 сегментов у ареновирусов до 11 — у ротавирусов. Наличие сегментов ведёт к увеличению кодирующей ёмкости генома. Вирусные РНК подразделяют на следующие группы: плюс-нити РНК (+РНК), минус-нити РНК (-РНК). У различных вирусов геном могут образовывать нити +РНК либо -РНК, а также двойные нити, одна из которых -РНК, другая (комплементарная ей) — +РНК.

Плюс-нити РНК представлены одиночными цепочками, имеющими характерные окончания («шапочки») для распознавания рибосом. К этой группе относят РНК, способные непосредственно транслировать генетическую информацию на рибосомах заражённой вирусом клетки, то есть выполнять функции мРНК. Плюс-нити выполняют следующие функции: служат мРНК для синтеза структурных белков, матрицей для репликации РНК, упаковываются в капсид с образованием дочерней популяции. Минус-нити РНК не способны транслировать генетическую информацию непосредственно на рибосомах, то есть они не могут функционировать как мРНК. Однако такие РНК служат матрицей для синтеза мРНК.

Многие вирусные нуклеиновые кислоты инфекционны сами по себе, так как содержат всю генетическую информацию, необходимую для синтеза новых вирусных частиц. Эта информация реализуется после проникновения вириона в чувствительную клетку. Инфекционные свойства проявляют нуклеиновые кислоты большинства +РНК- и ДНК-содержащих вирусов. Двухнитевые РНК и большинство -РНК не проявляют инфекционных свойств.

источник

специфичные в отношении вируса бешенства нейтрализующие моноклональные антитела человека и нуклеиновые кислоты и связанные с ними способы

Изобретение относится к иммунологии и биотехнологии. В изобретении описывается антитело и его фрагменты, нейтрализующие вирус бешенства, и способ лечения субъекта, подвергшегося воздействию вируса бешенства с использованием указанного антитела и его фрагмента. Раскрыты варианты выделенных нуклеиновых кислот, кодирующих полипептиды, несущих соответственно легкую и тяжелую цепь антитела. Описан экспрессирующий вектор, несущий по меньшей мере одну из указанных нуклеиновых кислот. Использование изобретения повышает длительность выживания субъектов после воздействия на них вируса бешенства и может найти применение в соответствующей профилактической терапии таких субъектов. 6 н. и 8 з.п. ф-лы, 1 ил., 1 табл.

1998, Jun, 4 (1): стр.37-47. http://ww../query.fcgi&cmd=Retrieve&db=Protein&list_u >

Изобретение относится к областям молекулярной биологии и иммунологии, и, более конкретно, к последовательностям нуклеиновой кислоты и аминокислотным последовательностям специфичных в отношении вируса бешенства нейтрализующих моноклональных антител человека.

Бешенство представляет собой острое неврологическое заболевание, вызванное инфицированием центральной нервной системы вирусом бешенства, членом рода Lyssavirus семейства Rhabdoviridae. Имея большое историческое значение вследствие своей древности и устрашающей природы вызываемого заболевания, вирус бешенства продолжает являться важной опасной инфекцией человека и ветеринарной инфекцией по причине наличия обширных резервуаров в разных видах диких животных. По большей части земного шара различные варианты вируса бешенства являются эндемичными для конкретных видов наземных животных, при этом между ними относительно мало общего. Хотя на некоторых островах, включая Объединенное Королевство, Австралию, Японию и многие другие острова, нет наземного бешенства, в UK и Австралии недавно обнаружили вирусы бешенства и вирусы, подобные вирусам бешенства, ассоциированные с летучими мышами.

Вирус бешенства обычно представляет собой пулевидную частицу, покрытую оболочкой, в среднем 75 на 180 нанометров. Вирион состоит из однонитевой антисмысловой геномной РНК и пяти структурных белкоз: нуклеопротеиновых молекул (N), фосфопротеина (NS), полимеразы (L), матриксного белка (К) и вирусного гликспротеина (G).

Белки N и G несут антигенные детерминанты, которые обеспечивают характеристику серотипов различных штаммов вируса бешенства. N-детерминанты являются высококонсервативными среди различных вирусных изолятов и поэтому широко используются как мишени для иммунохимической детекции инфекции вирусом бешенства с применением специфических антител. С другой стороны, антигенные детерминанты, находящиеся на белке G существенно варьируют среди штаммов вируса бешенства. Вируснейтрализующие антитела, полученные путем иммунизации инактивированным вирусом, направлены против G. Хотя ясно, что Т-клеточные реакции на G, N и NS участвуют в иммунном ответе на вирус в экспериментальных условиях, оценка иммунитета против вируса бешенства в основном ограничена серологией, особенно что касается вируснейтрализующих антител.

В тех областях земного шара, где еще обычным является бешенство человека, основным резервуаром вирусов, инфицирующих человека, является собака. Там, где собачье бешенство в значительной степени элиминировано вакцинацией, варианты вируса переносят лисы, койоты, скунсы, еноты, летучие мыши и различные другие млекопитающие. Во многих областях резервуары вируса в дикой природе продолжают расширяться. Более того, вирус бешенства может переноситься от резервуарных видов человеку или другим конечным хозяевам животными, в норме не ассоциированными с бешенством, такими как кошки, кролики, и т.д.

Будучи почти неизбежно фатальным, как только возникают клинические симптомы, бешенство может предотвращаться срочным лечением инфицированного субъекта комбинацией пассивной и активной иммунизации. Пассивная иммунизация включает введение предварительно образованных антител, нейтрализующих вирус бешенства, полученных из объединенной сыворотки субъектов, иммунных к бешенству (иммунный к бешенству глобулин человека; HRIG) или гипериммунных лошадей (иммунный к бешенству глобулин лошади; ERIG). Оба типа реагентов несут реципиентам некоторые опасности, включая вариабельную антигенную специфичность, и, таким образом, действенность в отношении различных вирусных изолятов.

HRIG получают из объединенных сывороток человека, поэтому имеется возможность, что препараты HRIG могут контаминироваться известными и неизвестными болезнетворными микроорганизмами человека. С другой стороны, будучи препаратом чужеродного антигена, ERIG связан с тяжелыми анафилактическими реакциями. Мышиные моноклональные антитела против вируса бешенства предложены к использованию при профилактике после воздействия, но, как и ERIG, являются антигенно чужеродными для человека. Это может приводить к их быстрому выведению из организма человека, а также к их способности вызвать анафилактическую реакцию.

Для представления лучшего реагента были получены моноклональные антитела человека путем слияния трансформированных вирусом Эпштейна-Барра (EBV), специфичных в отношении вируса бешенства В-клеток человека с гетерогибридными донорами мышь-человек. Клоны кДНК, кодирующие тяжелые и легкие цепи антител из данных клеток, конструировали таким образом, что данные антитела экспрессировались в гетерологических экспрессирующих системах. Данные конструкции обеспечивали продукцию нейтрализующих вирус бешенства антител человека определенной специфичности в контролируемой системе, очищенной от возможных вредных примесей. Настоящее изобретение относится к данным моноклональным, нейтрализующим вурус бешенства антителам человека, последовательностям нуклеиновой кислоты их тяжелых и легких цепей и аминокислотным последовательностям кодируемых белков. Настоящее изобретение также относится к способам применения данных моноклональных антител в качестве терапевтически эффективного профилактического лечения субъектов, подвергшихся воздействию вируса бешенства, после данного воздействия.

Целью настоящего изобретения является выделение молекул нуклеиновой кислоты, содержащих последовательность нуклеиновой кислоты тяжелой цепи и легкой цепи, кодирующую аминокислотную последовательность тяжелой цепи и легкой цепи. Аминокислотные последовательности тяжелой цепи и легкой цепи принадлежат моноклональному, нейтрализующему вирус бешенства антителу, которое специфично связывается с белком вируса бешенства.

В одном из осуществлений настоящего изобретения данные выделенные молекулы нуклеиновой кислоты, которые кодируют моноклональное, нейтрализующее вирус бешенства антитело, происходят из последовательностей кДНК тяжелой цепи SEQ ID NO: 1 и легкой цепи SEQ ID NO: 2.

Целью настоящего изобретения является предоставление выделенного моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела, которое кодируется клонами кДНК, кодирующими тяжелую и легкую цепь антитела, которые экспрессируются в гетерологических экспрессирующих системах и очищаются от вредных примесей. В одном из осуществлений настоящего изобретения аминокислотная последовательность выделенного моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела человека совпадает с SEQ ID NO: 3 и SEQ ID NO: 4, соответственно.

Настоящее изобретение относится к гену слияния, кодирующему химерную легкую цепь иммуноглобулина. Химерная легкая цепь содержит первую последовательность ДНК, кодирующую вариабельный регион легкой цепи иммуноглобулина моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела, продуцируемого клеточной линией гетерогибридомы; и вторую последовательность ДНК, кодирующую константный регион легкой цепи человека. Дальнейшей целью настоящего изобретения является предоставление экспрессирующего вектора для экспрессии данного гена слияния. Дальнейшей целью является предоставление клетки-хозяина для данного экспрессирующего вектора.

Настоящее изобретение относится к гену слияния, кодирующему химерную тяжелую цепь иммуноглобулина. Химерная тяжелая цепь содержит первую последовательность ДНК, кодирующую зариабельный регион тяжелой цепи иммуноглобулина моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела, продуцируемого клеточной линией гетерогибридомы; и вторую последовательность ДНК, кодирующую константный регион тяжелой цепи человека. Дальнейшей целью настоящего изобретения является предоставление экспрессирующего вектора для экспрессии данного гена слияния. Дальнейшей целью является предоставление клетки-хозяина для данного экспрессирующего вектора.

Другой целью настоящего изобретения является предоставление выделенного моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела, происходящего из гена слияния, кодирующего химерную легкую цепь иммуноглобулина, и гена слияния, кодирующего химерную тяжелую цепь иммуноглобулина.

Целью настоящего изобретения является предоставление способа лечения субъекта, подвергшегося воздействию вируса бешенства, путем введения субъекту терапевтически эффективного количества моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела человека, которое кодируется клонами кДНК, кодирующими тяжелую и легкую цепь антитела, которые экспрессируются в гетерологических экспрессирующих системах и очищаются от вредных примесей, предотвращая таким образом распространение вируса бешенства в центральную нервную систему.

Настоящее изобретение относится к моноклональным антителам, которые специфично связываются с гликопротеином различных штаммов вируса бешенства. Лечение после воздействия вируса моноклональным антителом или смесью различных моноклональных антител нейтрализует вирус бешенства в месте проникновения и предотвращает распространение вируса в центральную нервную систему (ЦНС). Таким образом, в случаях чрезкожного пути воздействия вируса бешенства или его воздействия на слизистые, специфичные в отношении бешенства моноклональные антитела применяют на месте укуса, а также вводят системно. Поскольку репликация вируса происходит почти исключительно в нейронах, нейтрализация и выведение вируса моноклональными антителами по настоящему изобретению перед проникновением в ЦНС является эффективной профилактикой после воздействия вируса.

В-клетки человека, использованные для гибридизации, получали из периферической крови 5 доноров в период между 7 и 21 сутками после третьей дозы первичной вакцинации от бешенства и 5 иммунных к бешенству доноров через 10-21 сутки после введения стимулирующей вакцины. Во всех случаях применяемой вакциной являлась вакцина диплоидных клеток человека Rabivac (вирусный штамм Pitman Moore 1503-3M, Behringwerke, Марбург, ФРГ). Все доноры являлись негативными при тестировании на ВИЧ и гепатит В. Клетки гибридной гетеромиеломы мышь-человек SHM-D33, задействованные в качестве гибридомных партнеров слияния (Teng, N.N. et al, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80, 7308, 1983) и лейкоциты мармозетки В95-8, трансформированные вирусом Эпштейна-Барра (EBV), применяемым в качестве источника EBV (Henderson et al., J. Exp. Med. Vol.76, p.152, 1977), были получены из АТСС (Rockvilie, Мэриленд).

Для оценки способности препаратов антител нейтрализовать различные вирусные штаммы бешенства использовали некоторое количество фиксированных лабораторных штаммов с различной антигенностью, а также два представительных уличных вируса бешенства. Фиксированные штаммы Evelyn-Rokitnicki-Abelseth (ERA), вирусный стандарт для введения, адаптированный для мозга мыши (CVS-24) или для клеточной культуры (CVS-11), и Pitman-Moore (PM) были получены из вирусной коллекции Университета Томаса Джефферсона. Вирус бешенства летучей мыши серой ночницы (SHBRV), ассоциированный с большей частью последних случаев бешенства в Соединенных Штатах Америки, и уличный вирус бешенства койота/мексиканский вирус собачьего бешенства (COSRV), являющийся членом семейства вирусов собачьего бешенства, были получены как описано (Morimoto et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.93, p.5653, 1996). Очистка вируса и получение гликопротеина (G) и нуклеопротеина (N) были описаны в других источниках (Dietzschold et al, World Health Organization, Geneva, p.175, 1996).

Трансформация EBV человеческих PBL

Мононуклеарные клетки периферической крови (РВМС) выделяли из цельной крови центрифугированием в градиенте плотности на Ficoll-Paque (Amersham Pharmacia Biotech, Piscataway, Нью-Джерси), как подробно описано в других источниках (Plebanski et al., Immunology Vol.75, p.86, 1992). Затем удаляли Т-клетки путем негативной селекции с использованием покрытых моноклональными антителами против CD2 магнитных гранул (Dynal Inc, Lake Success, Нью-Йорк) и концентратора магнитных частиц (Dynal). СD2-негативные клетки, преимущественно В-клетки, собирали и иммортализовали, как описано ранее (Swaminathan, 1992). В кратком изложении, клетки В95-8, культивированные до слияния в RPMI 1640 (Gibco BRL Life Technologies, Grand Island, Нью-Йорк), дополненной 10% фетальной сыворотки теленка (FBS; Gibco), лизировали путем замораживания-оттаивания на сухом льду для высвобождения внутриклеточного EBV. Надосадочную жидкость, содержащую EBV, осветляли центрифугированием при 1000 об/мин в течение 10 мин и путем фильтрации через фильтр с порами 0,45 мкм. Вирус концентрировали центрифугированием при 8000 об/мин в течение 2 ч при 4°С 7·10 6 В-клеток (ресуспендированных в 1 мл культуральной среды В95-8) инкубировали при 37°С в течение 2 ч с вирусом, полученным из 25 мл клеток В95-8. После инфекции клетки дважды отмывали культуральной средой, помещали в 96-луночный плоскодонный планшет для микротитрования (Nunc, Fisher Scientific, Pittsburgh, Пенсильвания) в концентрации 1·10 4 клеток/лунку и культивировали при 37°С в увлажненной атмосфере из 5% CO 2 и 95% воздуха.

Образование гетерогибридов мышь-человек

После того, как трансформированные EBV клетки культивировали примерно в течение 4 недель, надосадочную жидкость собирали и тестировали на предмет наличия антител, специфичных в отношении вируса бешенства посредством ELISA. Позитивные лунки переносили вначале в культуры объемом 1 мл, а затем в культуры объемом 2 мл (48- и 24-луночные планшеты, Nunc), и затем анализировали надосадочную жидкость посредством теста быстрого ингибирования фокусов флуоресценции (RFFIT) на предмет антител, нейтрализующих вирус бешенства, как подробно описано в других источниках (Hooper, ASM Press, WA p.755, 1997). Клеточные линии, продуцирующие нейтрализующие антитела, подвергали гибридизации с клетками SHM-D33 (инвентарный номер АТСС CRL1668) следующим образом. Равные количества SHM-D33 и клеток, трансформированных EBV (примерно 5·10 6 каждых) совместно добавляли в стерильную полистирольную круглодонную пробирку (Falcon, Fisher Scientific) и центрифугировали при 1000 об/мин в течение 10 мин. Клетки дважды отмывали бессывороточной средой и ресуспендировали клеточный осадок в 100 мкл среды.

Пробирки нагревали на водяной бане с температурой 37°С в течение 1 мин, и затем в течение 45-секундного периода добавляли по каплям 0,5 мл теплого (37°С) 50% (мас./об.) полиэтиленгликоля (Sigma Chemical Co., Сент-Луис, Миссури, кат. №Р-7181) при осторожном встряхивании пробирки. Затем реакцию слияния останавливали медленным добавлением 3 мл бессывороточной среды в течение 30 сек, с последующим добавлением 9 мл в течение 30 сек. Пробирки выдерживали при комнатной температуре в течение 8 мин и затем инкубировали в течение 2 мин на водяной бане с температурой 37°С. Затем клетки центрифугировали при 500 г в течение 3 мин и осторожно ресуспендировали клеточный сгусток в 30 мкл среды Dulbecco (IMDM; Gibco), в модификации Iscove, содержащей 10% FBS, а также 0,04 мкМ аминоптерина (Gibco) и 10 мкМ уабаина (Sigma) для селекции против негибридизовавшихся клеток. Суспензии клеток помещали в 96-луночные плоскодонные планшеты для микротитрования в концентрации 1·10 4 клеток на лунку и инкубировали, как описано для клеточных линий.

Когда колонии гетерогибридных клеток стали сформированными (примерно 6 недель культивирования), надосадочные жидкости тестировали на продукцию антител, специфичных в отношении вируса бешенства путем ELISA и RFFIT. Продуцирующие антитела клетки клонировали как минимум три раза путем лимитирующего разведения в планшетах для микротитрования. Клетки титровали в 96-луночных круглодонных планшетах в 2-кратных разведениях, начиная от 4 клеток на лунку. Клеткам из лунок, содержащих в среднем 0,25 клеток или менее, давали возможность пролиферировать для сбора надосадочной жидкости и дальнейшего анализа.

Анализ антител, специфичных в отношении вируса бешенства, посредством ELISA

Специфичность и изотип антител оценивали путем твердофазного ELISA. Планшеты (PolySorb, Nunc) при комнатной температуре, в увлажненной камере в течение ночи покрывали 5 мкг/мл вирусом бешенства ERA, гликопротеином или нуклеопротеином, разведенных в фосфатно-солевом буфере (PBS). Затем планшеты блокировали 5% порошковым молоком в PES и отмывали в PBS, содержащем 0,05% Tween 20 (PBS-Tween) перед добавлением образцов надосадочной жидкости.

После инкубации при комнатной температуре в течение 2 ч планшеты промывали PBS-Tween для удаления несвязавшегося первичного антитела и добавляли различные конъюгированные с ферментом или биотинилированные вторичные антитела, специфичные в отношении различных изотипов тяжелых цепей человека, с инкубацией в течение 1 ч при комнатной температуре. Вторичное антитело детектировали или по продукции в среде растворимого конечного продукта после добавления подходящего субстрата (3,3′,5,5′-тетраметилбензидин (ТМВ) в фосфатно-цитратном буфере или п-нитрофенилфосфат (PNPP) в 0,1М глициновом буфере, Sigma) или после добавления авидинащелочной фосфатазы (30 мин при КТ) и субстрата PNPP. Реакцию пероксидаза-ТМВ останавливали добавлением 2М H 2 SO 4 . Значения поглощения считывали на спектрофотометре для микропланшетов (Biotek, Winooski, Вермонт) при 450 нм для продукта ТМВ и при 405 нм для реакции PNPP.

Образцы надосадочной жидкости для каждой трансформированной клеточной линии анализировали на предмет наличия антител, нейтрализующих вирус бешенства с использованием разновидности теста быстрого ингибирования фокусов флуоресценции (RFFIT), как описано ранее (Hooper, ASM Press, WA p.755, 1997). Образцы надосадочной жидкости (50 мкл) подвергали разделению в 96-луночных плоскодонных планшетах (Nunc). 30 мкл разведения вируса бешенства, о котором известно, что оно вызывает 80-90% инфицирования индикаторных клеток, добавляли в каждый тестируемый образец, и инкубировали планшеты при 37°С в течение 1 ч. Контрольные образцы, отрицательные со средой и положительные с сывороткой, иммунной к бешенству, включали в каждый анализ. После инкубации 30 мкл клеток почки детеныша хомячка (ВНК) в концентрации 1,8×10 6 клеток/мл добавляли в каждую лунку, и инкубировали культуры в течение ночи при 37°С. Затем планшеты единожды отмывали ледяным PBS и фиксировали ледяным 90% ацетоном в течение 20 мин при 20°С. После фиксации ацетон удаляли, и планшеты сушили на воздухе. Для детекции инфицированных клеток ВНК к каждой лунке добавляли 40 мкл FITC-моноклонального глобулина против нуклеопротеина вируса бешенства (Centocor, Malvern, Пенсильвания) и инкубировали в течение 45 мин при 37°С. Затем планшеты трижды отмывали дистиллированной водой и исследовали под флуоресцентным микроскопом.

Очистка антител путем аффинной хроматографии

Антитело IgG1 очищали с использованием колонки с белком А (Protein A Sepharose Fast Flow, Amersham Pharmacia Biotech). В кратком изложении, надосадочные жидкости осветляли фильтрацией через мембрану с порами 0,45 мкм и доводили рН до 8,0 1н NaOH. Надосадочную жидкость пропускали через колонку с линейной скоростью потока, примерно равной 100 см/час. После промывки в PBS (pH 8) антитело элюировали с колонки с использованием 0,1М раствора лимонной кислоты, и затем диализовали против PBS.

Антитело IgG3 очищали с использованием колонки с белком G (Protein G Sepharose Fast Flow, Amersham Pharmacia Biotech). Надосадочную жидкость, содержащую IgG3, осветляли фильтрацией через мембрану с порами 0,45 мкм и доводили pH до 7,0 1н NaOH. Надосадочную жидкость пропускали через колонку с линейной скоростью потока, примерно равной 11 см/час. После промызки PBS антитело элюировали с колонки с использованием 0,1М глицинового буфера (pH 3,0), и затем диализовали против PBS.

Антитело IgM очищали с использованием маннансвязываюшего белка и модификации ранее описанного способа (Nevens et al., J. Chromatogr, vol.597, p.247, 1992). В кратком изложении, надосадочную жидкость, содержащую IgM, обрабатывали EDTA, доводили pH до 8,0 1М NaOH, фильтровали и охлаждали до 4°С. Агарозу с маннансвязывающим белком (Sigma) промывали в колонке при 4°С связывающим буфером, состоящим из 0,1 М NaHCO 3 /0,5 М NaCl, pH 8,3, и затем добавляли надосадочную жидкость и инкубировали на колонке в течение 15 мин при 4°С. Затем колонку отмывали несколькими объемами связывающего буфера и доводили до RT в течение 1 ч. IgM элюировали из колонки связывающим буфером при RT и диализовали против PBS.

Концентрации белка в диализованных препаратах антител определяли с использованием анализа по детекции белка (Bio-Rad Laboratories, Hercules, Калифорния) следующим образом. 100 мкл образца добавляли к 5 мл разведения 1/5 концентрата красящего реагента и инкубировали при RT в течение 10 минут. Отрицательный контроль PBS и различные белковые стандарты бычьего сывороточного альбумина (BSA) включали в каждый анализ. После инкубации образцы считывали в спектрофотометре при 595 нм. Концентрации белка в тестируемых образцах вычисляли по сравнению с поглощением стандартов BSA. Чистоту препаратов антител оценивали путем электрофореза в 12,5% полиакриламидном геле в восстанавливающих условиях (SDS-PAGE). Очищенные антитела характеризовались на SDS-PAGE двумя основными полосами, соответствующими тяжелым и легким цепям иммуноглобулина.

Получение, выделение и определение последовательности клонов кДНК Общую РНК выделяли из клеток гибридомы JA с использованием RNAzol В (Biotecx Laboratories, Houston). Реакции обратной транскрипции проводили при 42°С в течение 1 ч с обратной транскриптазой вируса миелобластоза птиц (Promega) и олиго(dT)-праймера. Часть продуктов обратной транскрипции подвергали амплификации полимеразной цепной реакцией (PCR) с использованием специфичных праймеров тяжелых цепей: праймер IgG-HF1 (5′-ACC ATG GAGTTTGGGCTGAG-3′ (SEQ ID NO: 5), старт-кодон подчеркнут, инвентарный номер Y14737), и праймер IgG-HR2 (5′-AC TCA TTTACCCGGGGACAG-3′ (SEQ ID NO: 6), стоп-кодон подчеркнут, инвентарный номер Y14737) или специфичных праймеров легких цепей: праймер IgG-LF5 (5′-AGC ATG GAAGCCCCAGCTCA-3′ (SEQ ID NO: 7), старт-кодон подчеркнут, инвентарный номер М63438), и праймер IgG-LR2 (5′-CT CTA ACACTCTCCCCTGTTG-3′ (SEQ ID NO: 8), стоп-кодон подчеркнут, инвентарный номер М63438). Амплификацию проводили в 35 циклов денатурации при 94°С в течение 60 секунд, с отжигом при 50°С в течение 60 секунд, и полимеризацией при 72°С в течение 90 секунд с ДНК-полимеразой Taq (Promeca). Продукты PCR (1,4 тыс.осн. для тяжелой цепи, 0,7 тыс.осн. для легкой цепи) очищали и определяли последовательность с использованием набора для циклического определения последовательности AmpliTaq (Perkin-Elmer) со специфическими праймерами. Продукты PCR клонировали в клонирующий вектор ТА, pCR2.1 (Invitrogen). Определяли последовательность клонированных кДНК тяжелой цепи и легкой цепи с использованием набора для циклического определения последовательности AmpliTaq (Perkin-Elmer) со специфическими праймерами.

Последовательности, кодирующие моноклональные антитела, нейтрализующие вирус бешенства

кДНК моноклональных антител и комплементарные ей последовательности представляют собой нуклеиновые кислоты моноклональных антител, описанные по настоящему изобретению. В описанном здесь конкретном осуществлении последовательность кДНК моноклонального антитела предоставлена для тяжелой цепи (SEQ ID NO: 1) и легкой цепи (SEQ ID NO: 2) моноклонального антитела из клона JA, будучи, таким образом, лишенной каких-либо интронов.

Данное изобретение также относится к однонитевым олигонуклеотидам для применения в качестве праймеров в PCR, в которой амплифицируется фрагмент, содержащий последовательность моноклонального антитела, относящийся, например, к вариабельному или гипервариабельному региону моноклонального антитела. Олигонуклеотид характеризуется последовательностью подлежащей гибридизации части, по крайней мере, по длине, равной 8 нуклеотидам, гена моноклонального антитела, а другой нуклеотид характеризуется последовательностью, обратно комплементарной нижележащей последовательности (в положении «даунстрим») той же цепи гена моноклонального антитела, так что каждый нуклеотид служит праймером для синтеза в направлении навстречу другому. Олигонуклеотиды по длине предпочтительно попадают в интервал 10-35 нуклеотидов.

Настоящее изобретение относится к полноразмерным последовательностям кДНК тяжелой и легкой цепей моноклонального антитела клона гетерогибридомы JA (SEQ ID NO: 1 и SEQ ID NO: 2, соответственно), и к кодируемым полипептидам аминокислот №1-474 тяжелой цепи (SEQ ID NO: 3) и аминокислот №1-234 легкой цепи (SEQ ID NO: 4).

В описанном здесь конкретном осуществлении изобретение относится к последовательности нуклеиновой кислоты моноклонального антитела из клона гетерогибридомы JA. В предпочтительном, но не ограничивающем аспекте изобретения клон гетерогибридомы JA является источником кДНК моноклонального антитела.

Функциональные эквиваленты моноклональных антител, нейтрализующих вирус бешенства

Данное изобретение также включает функциональные эквиваленты антител, представленных в данном описании. Функциональные эквиваленты обладают характеристиками связывания, сравнимыми с таковыми для антител, и включают, например, химерные или одноцепочечные антитела, а также их фрагменты. Способы продукции таких функциональных эквивалентов описаны в заявке РСТ WO 93/21319, в Европейской патентной заявке №239400; в заявке РСТ WO 89/09622; Европейской патентной заявке 338745; и Европейской патентной заявке ЕР 332424.

Функциональные эквиваленты включают полипептиды с аминокислотными последовательностями, по существу теми же самыми, что аминокислотные последовательности вариабельных или гипервариабельных регионов антител по настоящему изобретению. «По существу те же самые» аминокислотные последовательности определены здесь как последовательность по крайней мере с 70%-ной, предпочтительно, по крайней мере с 80%-ной, и, более предпочтительно, по крайней мере с 90%-ной гомологией в отношении другой аминокислотной последовательности, что определяется по поиску способом FASTA согласно Pearson and Lipman, Proc. Natl. Inst. Acad. Sci. USA 85, 2444-2448, 1988. Химерные антитела содержат константные регионы, происходящие в основном или исключительно из константных регионов человеческого антитела, и вариабельных регионов, происходящие в основном или исключительно из последовательности вариабельного региона моноклонального антитела из любой стабильной гетерогибридомы (Champion, J. M., et al., Journal of Immunological Methods, 235 81-90, 2000).

Одноцепочечные антитела или Fv-фрагменты представляют собой полипептиды, состоящие из вариабельного региона тяжелой цепи антитела, связанного с вариабельным регионом легкой цепи, при наличии или в отсутствие соединяющего линкера. Таким образом, Fv включает участок, комбинирующий целое антитело.

Функциональные эквиваленты, кроме того, включают фрагменты антител, которые обладают теми же или, по существу, теми же характеристиками связывания, как таковые для целого антитела. Такие фрагменты могут содержать один или несколько Fab-фрагментов F(ab’).sub.2-фрагмента. Предпочтительно, фрагменты антитела содержат все шесть определяющих комплементарность регионов целого антитела, хотя фрагменты, содержащие меньшее максимального количество таких регионов, такое как три, четыре или пять определяющих комплементарность региона, также являются функциональными. Функциональные эквиваленты являются членами класса иммуноглобулинов IgG и его подклассов, но могут представлять собой или сочетать любые из следующих классов иммуноглобулинов: IgM, IgA, IgD или IgE, и их подклассов. Тяжелые цепи разных подклассов, таких как подклассы IgG, ответственны за различные эффекторные функции, и, таким образом, за счет выбора требуемого константного региона тяжелой цепи продуцируют химерные антитела с требуемой эффекторной функцией. Предпочтительными константными регионами являются гамма-1 (IgG1), гамма-3 (IgG3) и гамма-4 (IgG4). Константный регион легкой. цепи может быть типа каппа или лямбда.

Иммуноглобулины по настоящему изобретению могут быть моновалентными, дивалентными или поливалентными. Моновалентные иммуноглобулины представляют собой димеры (HL), образованные химерной тяжелой цепью, ассоциированной через дисульфидные мостики с химерной легкой цепью. Дивалентные иммуноглобулины представляет собой тетрамеры (H.sub.2 L.sub.2), образованные двумя димесами, ассоциированными по крайней мере через один дисульфидный мостик.

Стандартные способы рекомбинантной ДНК

Стандартные способы рекомбинантной ДНК описаны в Sambrook et al., «Molecular Cloning», Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1987) и Ausubel et al. (Eds) «Current Protocols in Molecular Biology», Green Publishing Associates/Wiley-Interscience, New York (1990).

В кратком изложении, выбирают подходящим источником клеток, содержащих молекулы нуклеиновой кислоты, которые экспрессируют требуемую ДНК, такую как относящуюся к антителу или эквиваленту антитела. Общую РНК получают путем стандартных процедур из подходящего источника. Общую РНК применяют для непосредственного синтеза кДНК. Стандартные способы выделения РНК и синтеза кДНК описаны в стандартных руководствах по молекулярной биологии, таких как, например, те, что описаны выше.

кДНК может быть амплифицирована известными способами. Например, кДНК может использоваться в качестве матрицы для амплификации путем полимеразной цепной реакции (PCR); см. Saiki et al., Science, 239, 487, 1988 или Mullis et al., патент США №683195. Последовательности олигонуклеотидных праймеров для амплификации путем PCR происходят из известных, подлежащих амплификации последовательностей. Данные олигонуклеотиды синтезируют способами, известными в данной области. Подходящие способы включают те, что описаны Caruthers в Science 230, 281-285, 1985.

Смесь вышележащих и нижележащих (в положениях «апстрим» и «даунстрим») олигонуклеотидов применяют при амплификации путем PCR. Условия оптимизируют для каждой конкретной пары праймеров по стандартным процедурам. Продукт PCR анализируют, например, путем электрофореза, на предмет кДНК, характеризующейся правильным размером, соответствующим последовательности между праймерами.

Альтернативно, кодирующий регион может амплифицироваться в двух или более перекрывающихся фрагментах. Перекрывающиеся фрагменты конструируют с включением сайтов рестрикции, позволяющих объединение фрагментов в интактную кДНК.

Для выделения целых кодирующих белок регионов тяжелых и легких цепей каждого моноклонального антитела из каждой клеточной линии гетерогибридомы вышележащий олигонуклеотидный праймер для PCR, например, комплементарен последовательности на 5′-конце, включая старт-кодон ATG и по крайней мере 5-10 нуклеотидов левее старт-кодона. Нижележащий олигонуклеотидный праймер для PCR комплементарен последовательности на 3′-конце требуемой последовательности ДНК. Требуемая последовательность кДНК кодирует целую часть тяжелой и легкой цепей каждого моноклонального антитела, включая стоп-кодон.

Подлежащая амплификации кДНК, такая как та, что кодирует антитела или эквиваленты антител, также может реплицироваться в состав широкого спектра клонирующих векторов в широком спектре клеток-хозяев. Клетка-хозяин может являться прокариотической или эукариотической.

Вектор, в который встраивается кДНК моноклонального антитела, может включать сегменты хромосомных, нехромоссмных и синтетических последовательностей ДНК. Некоторые подходящие прокариотические клонирующие векторы включают в качестве неограничивающих примеров плазмиды из Е.coli, такие как colEl, pCRl, pBR322, pMB9, pUC, pKSM и RP4. Прокариотические векторы также включают в качестве неограничивающих примеров производные ДНК фагов, таких как М13, и другие нитевидные фаги с однонитевой ДНК.

Вектор, содержащий подлежащую экспрессии кДНК моноклонального антитела, трансфицируется в подходящую клетку-хозяина, как описано ниже. Клетку-хозяина выдерживают в подходящей культуральной среде, и подвергают воздействию условий, в которых клетки и вектор реплицируются.

В основном химерные антитела продуцируют путем получения для каждого компонента легкой и тяжелой цепи химерного иммуноглобулина гена слияния, включающего первый сегмент ДНК, который кодирует по крайней мере функциональную часть специфичного к вирусу бешенства, предпочтительно к гликопротеину, нейтрализующего вариабельного региона человека (например, функционально перестроенного вариабельного региона с соединяющим сегментом), связанную со вторым сегментом ДНК, кодирующим по крайней мере часть человеческого константного региона. Каждый ген слияния встроен или включен в экспрессирующий вектор. Затем данными генами трансфицируют клетки-реципиенты, способные экспрессировать генные продукты. Трансфицированные клетки-реципиенты культивируют в условиях, которые дают возможность для экспрессии включенных генов, и получают экспрессированные иммуноглобулины или иммуноглобулиновые цепи.

Гены, кодирующие вариабельный регион тяжелых и легких цепей иммуноглобулина получают из лимфоидных клеток, которые продуцируют моноклональные антитела, нейтрализующие вирус бешенства. Например, клеточные линии гетерогибридомы, продуцирующие моноклональные антитела против гликопротеина вируса бешенства, представляют источник иммуноглобулинового вариабельного региона для настоящих химерных антител. Константные регионы получают из антителопродуцирующих клеток человека стандартными способами клонирования. Альтернативно, поскольку гены, представляющие два класса легких цепей и пять классов тяжелых цепей, были клонированы, константные регионы человеческого происхождения легко доступны из данных клонов. Химерные связывающие фрагменты антитела, такие как F(ab’).sub.2 и Fab-фрагменты, получают путем конструирования гена химерной тяжелой цепи в укороченной форме. Например, химерный ген, кодирующий часть тяжелой цепи F(ab’).sub.2 включает последовательности ДНК, кодирующие СН.sub.1-домен и шарнирный регион тяжелой цепи. Альтернативно, такие фрагменты могут быть получены ферментным расщеплением химерного иммуноглобулина. Например, расщепление папаином или пепсином может приводить к образованию Fab- или F(ab’).sub.2-фрагментов соответственно.

Предпочтительно, гены слияния, кодирующие тяжелую и легкую химерные цепи или их части, встроены в два разных экспрессируащих вектора, которые могут использоваться для совместной трансфекции клеток-реципиентов. Каждый вектор содержит два подлежащих селекции гена, один для селекции в бактериальной системе и один для селекции в эукариотической системе, причем каждый вектор имеет отличную от другого пару генов. Данные векторы дают возможность для продукции и амплификации генов слияния в бактериальных системах, и последующей совместной трансфекции эукариотических клеток и селекции совместно трансфицированных клеток. Неограничизающие примеры генов, подлежащих селекции в бактериальных системах, включают гены, обеспечивающие резистентность к ампициллину, и ген, обеспечивающий резистентность к хлорамфениколу. Предпочтительные два подлежащих селекции гена для селекции эукариотических трансфицированных клеток приведены в качестве неограничивающих примеров: (i) ген ксантин-гуанинфосфорибозилтрансферазы (gpt) и (ii) ген фосфотрансферазы из Тn5 (обозначенный neo). Селекция gpt основана на способности фермента, кодируемого данным геном, использовать ксантин в качестве субстрата для синтеза пуриновых нуклеотидов; аналогичный эндогенный фермент этого не может. В среде, содержащей ксантин и микофеноловую кислоту, которая блокирует преобразование инозин-монофосфата в ксантин-монофосфат, могут выживать только клетки, экспрессирующие ген gpt. Продукт neo блокирует ингибирование синтеза белка в эукариотических клетках, вызванное антибиотиком G418 и другими антибиотиками его класса. Две процедуры селекции могут применяться одновременно или последовательно для селекции на экспрессию генов цепей иммуноглобулина, введенных в эукариотическую клетку в двух разных векторах ДНК.

Вследствие присущей генетическому коду вырожденности другие последовательности ДНК, кодирующие по существу те же или функционально эквивалентные аминокислотные последовательности тяжелых и легких цепей, находятся в объеме настоящего изобретения. Измененные последовательности ДНК, которые могут использоваться по изобретению, включают делеции, дополнения и замены различных нуклеотидных остатков, приводящих к образованию последовательности, которая кодирует тот же или функционально эквивалентный генный продукт. Данный продукт сам может содержать делеции дополнения и замены различных аминокислотных остатков в последовательности легкой или тяжелой цепи, которые приведут к молчащим изменениям, с продукцией таким образом функционально эквивалентного моноклонального антитела.

По настоящему изобретению нуклеотидные последовательности, кодирующие тяжелую и легкую цепи моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела, его фрагмент или аналог, встраивают в. подходящий экспрессирующий вектор. Данный вектор содержит элементы, необходимые для транскрипции и трансляции встроенной последовательности, кодирующей белок, так что генерируются рекомбинантные молекулы ДНК, которые направляют экспрессию легкой и тяжелой иммуноглобулиновых цепей для образования моноклонального, нейтрализующего вирус бешенства антитела.

Предпочтительной реципиентной клеточной линией является линия клеток миеломы. Клетки миеломы могут синтезировать, конструировать и секретировать иммуноглобулины, кодируемые трансфицированными генами иммуноглобулина. Кроме того, они обладают механизмом гликозилирования иммуноглобулина. Особенно предпочтительной клеткой-реципиентом является клеточная линия миеломы, которая не продуцирует иммуноглобулин, такая как Sp2/0. Данные клеточные линии продуцируют только иммуноглобулин, кодируемый трансфицированными генами иммуноглобулина. Клетки миеломы могут выращиваться в культуре или в брюшной полости мышей, где секретируемый иммуноглобулин может быть получен из асцитной жидкости. В качестве подходящих клеток-реципиентов могут служить другие лимфоидные клетки, такие как В-лимфоциты или клетки гибридомы.

Существует несколько способов трансфекции лимфоидных клеток векторами, содержащими гены, кодирующие иммуноглобулин. Предпочтительным путем введения ДНК в лимфоидные клетки является введение путем электропорации. По данной процедуре клетки-реципиенты подвергаются воздействию электрического импульса в присутствии ДНК, подлежащей включению. Другим путем введения ДНК является слияние с протопластом. По данному способу лизоцим применяется для снятия клеточной стенки с бактерий, несущих рекомбинантную плазмиду, содержащую иммуноглобулиновый ген. Полученные в результате сферопласты сливаются с клетками миеломы посредством полиэтиленгликоля. После слияния с протопластом трансфицированные клетки отбирают и выделяют. Другой способ, который может использоваться для введения ДНК в клетки многих типов, представляет собой преципитацию фосфатом кальция.

Иммуноглобулиновые гены также могут экспрессироваться в нелимфоидных клетках, таких как бактерии или дрожжи. При экспрессии в бактериях тяжелые цепи и легкие цепи иммуноглобулина становятся частью телец включения. Таким образом, данные цепи должны быть выделены и очищены, а затем смонтированы в функциональные иммуноглобулиновые молекулы. Доступны другие стратегии для экспрессии в Е.coli (см., например, Pluckthun, A., BioTechnology 9: 545-551, 1991; Skerra, A. et al., BioTechnology 9: 273-278, 1991), включая секрецию из Е.coli в виде белков слияния, включающих сигнальную последовательность.

Вирус-нейтрализующее действие моноклонального антитела, состоящего из тяжелой цепи с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 3 и легкой цепи с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 4, было проверено против изолята вируса бешенства с использованием быстрого флуоресцентного теста (RFFIT) и отражено в Таблице 1. Активность испытуемого антитела была сравнена с нейтрализующей активностью коммерчески доступного препарата иммуноглобулина человека против бешенства (HRIG) (Imogam-rabies®, Pasteur Merieux Connaught).

Нейтрализующее действие препарата антитела была определена в четырех повторностях с двукратным шагом титрования, используя клетки нейробластомы мыши в качестве основы для роста вируса. Антитела были разбавлены до концентрации 0,02 Ед/0,1 мл раствора. Приблизительно 50-100 TCID 50 каждого вируса, из числа указанных в Таблице 1, культивировали с антителом в течение 90 минут при 37°С. Затем была добавлена аликвота из 200 мкл суспензии клеток нейробластомы мыши (50000 клеток/мл) и далее проводили культивирование в течение 40 часов при 37°С. После фиксации ацетоном инфицированные вирусом клетки визуализировались окрашиванием при помощи антирабического реактива, меченого изотиоцианатом флуоресцеина. Положительная оценка базировалась на результате, соответствующем полной нейтрализации вируса. Результаты приведены в Таблице 1 («+» нейтрализация; «0» — нет нейтрализации).

Моноклональное антитело на основе SEQ ID NO: 3/SEQ ID NO: 4 нейтрализовало каждый испытуемый вариант вируса бешенства. Моноклональное антитело нейтрализовало даже штамм вируса бешенства, полученный от летучей мыши (Lasionycteris noctivagans), который был устойчив к действию коммерческого препарата.

Классы МПК: C07K16/08 против материала из вирусов
C12N15/13 иммуноглобулины
C12N15/63 введение чужеродного генетического материала с использованием векторов; векторы; использование их хозяев; регулирование экспрессии
A61K39/42 вирусные
A61P31/12 противовирусные средства
Автор(ы): ХУПЕР Дуглас К. (US) , ДИТЦШОЛЬД Бернхард (US)
Патентообладатель(и): ТОМАС ДЖЕФФЕРСОН ЮНИВЕРСИТИ (US)
Приоритеты:
Таблица 1
Нейтрализация вируса бешенства под действием HRIG и моноклоналыюго антитела с SEQ ID NO:3/SEQ ID NO:4
Изолят вируса бешенства (источник образца) HRIG Mab
(1) Енот (Procyon lotor), восточная область США +
(2) Скунс (Mephitis mephitis), северная и центральная области США +
(3) Скунс (М.mephitis), южная и центральная области США +
(4) Скунс (М.mephitis),Калифорния, США +
(5) Серая лисица (Urocyon cinereoargenteus), Техас, США. +
(6) Серая летучая мышь (Lasiurus cinereus)
(7) Летучая мышь кожан бурый (Eptesicus fuscus), Нью Йорк, США +
(8) Летучая мышь кожан бурый (E.fuscus), Вашингтон, США +
(9) Летучая мышь вечерник серебристый (Lasionycteris noctivagans), США +
(10) Собака, граница США-Мексика +
(11)Собака, Таиланд +
(12) Собака, Филиппины +
(13) Арктическая лисица (Alopex lagopus), Аляска, США +

Эксперимент in vivo, по оценке эффективности нейтрализации вируса моноклональным антителом, состоящим из тяжелой цепи с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 3 и легкой цепи с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 4, был проведен с использованием выделенного вируса бешенства техасского койота. В качестве чувствительной модели использовали сирийских хомячков. Группе из шести испытуемых животных и группе из десяти контрольных животных вводили в правую икроножную мышцу (gastrocnemius) 50 мкл гомогената слюнной железы койота, инфицированного (в естественных условиях) вирусом бешенства, в разведении 1:1000. Через 24 часа хомячкам вводили 50 мкл моноклонального антитела с концентрацией 0,68 мг/мл, что эквивалентно приблизительно 0,24 ME противорабической активности.

Результаты эксперимента показали, что имеется достоверное различие в длительности выживания для двух групп (р=0.0075). Различие определено по критерию Манна-Уитни.

Для наглядности результаты представлены графически. Прямоугольники отражают результаты выживания в диапазоне 25-75 персентилей. Медиана (50 персентилей) в группе, получившей антитело, выделена в виде линии внутри прямоугольника. Интервальные отметки показывают разброс данных как максимальный и минимальный результат внутри группы.

1. Антитело, которое нейтрализует вирус бешенства, включающее полипептид тяжелой цепи, имеющий по меньшей мере 80%-ную гомологию по отношению к аминокислотной последовательности SEQ ID NO:3, и полипептид легкой цепи, имеющий по меньшей мере 80%-ную гомологию по отношению к аминокислотной последовательности SEQ ID NO:4.

2. Антитело по п.1, включающее полипептид тяжелой цепи, имеющий по меньшей мере 90%-ную гомологию по отношению к аминокислотной последовательности SEQ ID NO:3, и полипептид легкой цепи, имеющий по меньшей мере 90%-ную гомологию по отношению к аминокислотной последовательности SEQ ID NO:4.

3. Антитело по п.1 или 2, которое представляет собой антитело человека.

4. Антитело по п.1 или 2, которое представляет собой антитело IgG1.

5. Антитело по п.2, включающее полипептид тяжелой цепи, имеющий аминокислотную последовательность SEQ ID NO:3, и полипептид легкой цепи, имеющий аминокислотную последовательность SEQ ID NO:4.

6. Фрагмент антитела, охарактеризованного в любом из пп.1-5, нейтрализующий вирус бешенства, где указанный фрагмент выбран из группы, состоящей из Fv фрагментов, Fab фрагментов и F(ab’) 2 фрагментов.

7. Выделенная нуклеиновая кислота, которая кодирует полипептид, содержащий аминокислотную последовательность SEQ ID NO:3, где полипептид содержит тяжелую цепь антитела, нейтрализующего вирус бешенства.

8. Нуклеиновая кислота по п.7, включающая нуклеотидную последовательность SEQ ID NO:1, кодирующую аминокислотную последовательность SEQ ID NO:3.

9. Выделенная нуклеиновая кислота, которая кодирует полипептид, содержащий аминокислотную последовательность SEQ ID NO:4, где полипептид содержит легкую цепь антитела, нейтрализующего вирус бешенства.

10. Нуклеиновая кислота по п.9, включающая нуклеотидную последовательность SEQ ID NO:2, кодирующую аминокислотную последовательность SEQ ID NO:4.

11. Экспрессирующий вектор, включающий по меньшей мере одну нуклеиновую кислоту по любому из пп.7-10.

12. Вектор по п.11, включенный в клетку-хозяин.

13. Способ лечения субъекта, подвергшегося воздействию вируса бешенства, включающий введение указанному субъекту терапевтически эффективного количества антитела по любому из пп.1-5 или фрагмента по п.6.

14. Способ по п.13, в котором антитело или фрагмент применяют в месте укуса субъекта или вводят системно.

источник

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *